zhpsЖурнал прикладной спектроскопииZhurnal Prikladnoii Spektroskopii0514-7506B. I. Stepanov Institute of Physics of the National Academy of Scienceszhps-972Research ArticleII. МОЛЕКУЛЯРНАЯ СПЕКТРОСКОПИЯMOLECULAR SPECTROSCOPYШирина линий в спектрах протонного ЯМР, полученных для кист и абсцессов челюсти на частоте 400 МГц (англ.)Linewidths of Proton Nuclear Magnetic Resonance Peaks Obtained for Jaw Cysts and Abscesses at 400 MHz (In Engl.)YilmazU. N.YilmazU. N.

Диярбакыр

Diyarbakir

utkunezih@gmail.comYilmazB. D.YilmazB. D.

Диярбакыр

Diyarbakir

KöylüM. Z.KöylüM. Z.

Диярбакыр

Diyarbakir

Университет ДиклеUniversity of Dicle2022030220228916974Copyright © Yilmaz U.N., Yilmaz B.D., Köylü M.Z., 20222022Yilmaz U.N., Yilmaz B.D., Köylü M.Z.Yilmaz U.N., Yilmaz B.D., Köylü M.Z.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://zhps.ejournal.by/jour/article/view/972

Проведено сравнение ширины линий ЯМР протонов полутяжелой воды (HOD) в образцах 29 негеморрагических кист челюсти, 8 геморрагических кист и 19 абсцессов и исследована зависимость ширины линии от содержания жидкости и углов приложения радиочастотного поля (RF). Смеси для сравнения готовили путем добавления 0.05 мл каждой кисты или абсцесса к 0.95 мл D2O. Приготовлена серия смесей, содержащих различные количества образца. Измерения ЯМР всех смесей на частоте 400 МГц получены с использованием только 90° радиочастотного импульса. Средние значения ширины линий кистозных групп сильно различаются (p = 0.004). Однако наблюдается умеренная разница между средними ширинами линий для негеморрагических кист и абсцессов (p = 0.048) и геморрагических кист и абсцессов (p = 0.045). Ширина линии линейно возрастает с увеличением содержания жидкости, но уменьшается с увеличением RF. Показано, что измерения ширины линии позволяют отличить кисты от абсцессов. Концентрационная зависимость ширины линии также предполагает, что быстрый химический обмен протонов между свободными и связанными молекулами HOD способствует увеличению ширины линии.

We compare the nuclear magnetic resonance (NMR) linewidths of semi-heavy water (HOD) proton peaks in 29 nonhemorrhagic jaw cysts, 8 hemorrhagic cysts, and 19 abscesses. We also investigate the dependence of linewidths on fluid content and radio frequency (RF) application angles. The mixtures used for comparisons were prepared by adding 0.05 mL of each cyst or abscess to 0.95 mL of D2O. A series of mixtures containing varying amounts of the sample was also prepared. NMR measurements of all mixtures at 400 MHz were acquired using only a 90° RF pulse. The mean linewidths of the cystic groups were quite different (p = 0.004) from each other. However, there was a moderate difference between the mean linewidths of nonhemorrhagic cysts and abscesses (p = 0.048) and between those of hemorrhagic cysts and abscesses (p = 0.045). The linewidth increases linearly with increasing fluid content but decreases with increasing RF application angle. In conclusion, the data suggest that linewidth measurements can distinguish cysts from abscesses. The concentration dependence of the linewidth also suggests that the rapid chemical exchange of protons between free and bound HODs contributes to the broadening of the linewidth.

ЯМР 400 МГцкиста челюстиабсцесс челюстиширина линий400-MHz nuclear magnetic resonancejaw cystsjaw abscesseslinewidthsWe thank Associate Professor Cezmi Kayan for his assistance at the NMR facility. We also thank Edanz (https://www.edanz.com/ac) for editing a draft of this manuscript.ReferencesH. Budak, M. Z. Koylu, U. N. Yilmaz, Spectroscopy, 20, No. 4, 177–183 (2006).H. Budak, M. Z. Koylu, U. N. Yilmaz, Spectroscopy, 20, No. 4, 177–183 (2006).U. N. Yilmaz, B. D.Yilmaz, J. Appl. Spectrosc., 87, No. 5, 946–950 (2020).U. N. Yilmaz, B. D.Yilmaz, J. Appl. Spectrosc., 87, No. 5, 946–950 (2020).U. N. Yilmaz, F. Yaman, S. S. Atilgan, Dentomaxillofac. Radiol., 41, No. 5, 385–391 (2012).U. N. Yilmaz, F. Yaman, S. S. Atilgan, Dentomaxillofac. Radiol., 41, No. 5, 385–391 (2012).Y. Li, D. Xu, E. Ozturk-Isik, J. M. Lup, A. P. Chen, D. B. Vigneron, S. J. Nelson, J. Mol. Imaging Dynam., S1:002 (2012), doi: 10.4172/2155-9937.S1-002.Y. Li, D. Xu, E. Ozturk-Isik, J. M. Lup, A. P. Chen, D. B. Vigneron, S. J. Nelson, J. Mol. Imaging Dynam., S1:002 (2012), doi: 10.4172/2155-9937.S1-002.T. Horiguchi, T. Morita, J. Phys. C: Solid State Phys., 13, No. 23, L631–638 (1980).T. Horiguchi, T. Morita, J. Phys. C: Solid State Phys., 13, No. 23, L631–638 (1980).G. Mladenov, V. S. Dimitrov, Magn. Res. Chem., 39, No.11, 672–680 (2001).G. Mladenov, V. S. Dimitrov, Magn. Res. Chem., 39, No.11, 672–680 (2001).D. Lennart, H. Strehlow, Z. Phys. Chem., 220, No. 5, 641–653 (2006).D. Lennart, H. Strehlow, Z. Phys. Chem., 220, No. 5, 641–653 (2006).K. Chen, N. Tjandra, J. Magn. Res., 197, No. 1, 71–76 (2009).K. Chen, N. Tjandra, J. Magn. Res., 197, No. 1, 71–76 (2009).M. J. Wilhelm, H. H. Ong, F. W. Wehrli, Proc. ISMRM 20th Annual Meeting & Exhibition, 5–11 May 2012, Melbourne, Australia, 2394 (2012).M. J. Wilhelm, H. H. Ong, F. W. Wehrli, Proc. ISMRM 20th Annual Meeting & Exhibition, 5–11 May 2012, Melbourne, Australia, 2394 (2012).A. Ahlner, M. Carlsson, B. H. Jonsson, P. Lundström, J. Biomol. NMR, 56, No. 3, 191–202 (2013).A. Ahlner, M. Carlsson, B. H. Jonsson, P. Lundström, J. Biomol. NMR, 56, No. 3, 191–202 (2013).I. R. Klecknera, M. P. Foster, Biochim. Biophys. Acta, 1814, No. 8, 942–968 (2011).I. R. Klecknera, M. P. Foster, Biochim. Biophys. Acta, 1814, No. 8, 942–968 (2011).U. Sternberg, R. Witter, I. Kuprov, J. M. Lamley, A. Oss, J. R. Lewandowski, A. Samoson, J. Magn. Res., 291, 32–39 (2018).U. Sternberg, R. Witter, I. Kuprov, J. M. Lamley, A. Oss, J. R. Lewandowski, A. Samoson, J. Magn. Res., 291, 32–39 (2018).A. Pandya, M. J. Howard, M. Zloh, P. A. Dalby, Pharmaceutics, 10, No. 4, E165–189 (2018), doi: 10.3390/pharmaceutics10040165.A. Pandya, M. J. Howard, M. Zloh, P. A. Dalby, Pharmaceutics, 10, No. 4, E165–189 (2018), doi: 10.3390/pharmaceutics10040165.S. Maity, R. K. Gundampati, T. K. S. Kumar, Nat. Prod. Commun., 14, No. 5, 1–17 (2019).S. Maity, R. K. Gundampati, T. K. S. Kumar, Nat. Prod. Commun., 14, No. 5, 1–17 (2019).A. B. Siemer, K. Y. Huang, A. E. McDermott, PLoS One, 7, No. 10, e47242 (2012), doi: 10.1371/journal.pone.0047242.A. B. Siemer, K. Y. Huang, A. E. McDermott, PLoS One, 7, No. 10, e47242 (2012), doi: 10.1371/journal.pone.0047242.C. A. Waudby, A. Ramos, L. D. Cabrita, J. Christodoulou, Sci. Rep., 6, 24826 (2016), doi: 10.1038/srep24826.C. A. Waudby, A. Ramos, L. D. Cabrita, J. Christodoulou, Sci. Rep., 6, 24826 (2016), doi: 10.1038/srep24826.I. V. Sergeyev, B. Itin, R. Rogawski, L. A. Day, A. E. McDermott, Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 114, No. 20, 5171–5176 (2017).I. V. Sergeyev, B. Itin, R. Rogawski, L. A. Day, A. E. McDermott, Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 114, No. 20, 5171–5176 (2017).M. Niklasson, R. Otten, A. Ahlner, C. Andresen, J. Schlagnitweit, K. Petzold, P. Lundström, J. Biomol. NMR, 69, No. 2, 93–99 (2017).M. Niklasson, R. Otten, A. Ahlner, C. Andresen, J. Schlagnitweit, K. Petzold, P. Lundström, J. Biomol. NMR, 69, No. 2, 93–99 (2017).A. Van-Quynh, S. Willson, R. G. Bryant, Biophys. J., 84, No. 1, 558–563 (2003).A. Van-Quynh, S. Willson, R. G. Bryant, Biophys. J., 84, No. 1, 558–563 (2003).A. Yilmaz, B. Zengin, F. S. Ulak, J. Appl. Spectrosc., 81, No. 3, 365–370 (2014).A. Yilmaz, B. Zengin, F. S. Ulak, J. Appl. Spectrosc., 81, No. 3, 365–370 (2014).A. Yilmaz, B. Zengin, J. Appl. Spectrosc., 80, No. 3, 335–340 (2013).A. Yilmaz, B. Zengin, J. Appl. Spectrosc., 80, No. 3, 335–340 (2013).V. V. Krishnan, N. Murali, Prog. Nucl. Magn. Res. Spectrosc., 68, 41–57 (2013).V. V. Krishnan, N. Murali, Prog. Nucl. Magn. Res. Spectrosc., 68, 41–57 (2013).O. Jardetzky, G. C. K. Roberts, In: NMR in Molecular Biology, Ch. IV: Time-Dependent Phenomena and Problems of Averagıng, Eds. B. Horecker, N. O. Kaplan, J. Marmur, Academic Press, Orlando, 115–142 (1981).O. Jardetzky, G. C. K. Roberts, In: NMR in Molecular Biology, Ch. IV: Time-Dependent Phenomena and Problems of Averagıng, Eds. B. Horecker, N. O. Kaplan, J. Marmur, Academic Press, Orlando, 115–142 (1981).A. Carrington, A. D. McLachlan, Introduction to Magnetic Resonance, Harper & Row, New York (1967).A. Carrington, A. D. McLachlan, Introduction to Magnetic Resonance, Harper & Row, New York (1967).A. Farmany, Acta Phys. Pol. A, 117, No. 3, 454–456 (2010).A. Farmany, Acta Phys. Pol. A, 117, No. 3, 454–456 (2010).N. Okazawa, T. S. Sorensen, Can. J. Chem., 56, 2737–2742 (1978).N. Okazawa, T. S. Sorensen, Can. J. Chem., 56, 2737–2742 (1978).E. T. Fossel, J. M. Carr, J. McDonagh, N. Engl. J. Med., 315, No. 22, 1369–1376 (1986).E. T. Fossel, J. M. Carr, J. McDonagh, N. Engl. J. Med., 315, No. 22, 1369–1376 (1986).P. Wilding, M. B. Senior, T. Inubuehl, M. L. Ludwick, Clin. Chem., 34, No. 3, 505–511 (1988).P. Wilding, M. B. Senior, T. Inubuehl, M. L. Ludwick, Clin. Chem., 34, No. 3, 505–511 (1988).R. G. Bryant, K. Marill, C. Blackmore, C. Francis, Mag. Res. Med., 13, No. 11, 133–144 (1990).R. G. Bryant, K. Marill, C. Blackmore, C. Francis, Mag. Res. Med., 13, No. 11, 133–144 (1990).P. J. Foxall, R. G. Price, J. K. Jones, G. H. Neild, F. D. Thompson, J. K. Nicholson, Biochim. Biophys. Acta, 1138, No. 4, 305–314 (1992).P. J. Foxall, R. G. Price, J. K. Jones, G. H. Neild, F. D. Thompson, J. K. Nicholson, Biochim. Biophys. Acta, 1138, No. 4, 305–314 (1992).

The authors declare that there are no conflicts of interest present.