ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ПАРАМЕТРОВ ПЕРЕМЕННОЙ ФЛУОРЕСЦЕНЦИИ ХЛОРОФИЛЛА А ДЛЯ ОЦЕНКИ СОСТОЯНИЯ ФОТОСИНТЕТИЧЕСКОГО АППАРАТА В ЛИСТЬЯХ САЖЕНЦЕВ ЛИСТОПАДНЫХ ДЕРЕВЬЕВ ПРИ ДЕЙСТВИИ ТЕХНОГЕННЫХ УГЛЕВОДОРОДОВ

Оценку последействия техногенных углеводородов (бенз(а)пирена, бутилацетата и о-ксилола) на состояние стрессочувствительной фотосистемы 2 в листьях саженцев березы повислой, липы мелколистной, клена остролистного и тополя пирамидального осуществляли по совокупности параметров амплитудно-импульсной модулированной (РАМ) флуориметрии. Степень ответа на токсикацию была близка у токсикантов разной природы, но зависела от стрессовой предыстории растений: саженцы березы, перенесшие природный стресс, слабее реагировали на химический. Наиболее высокая реакция на токсикацию и быстрая адаптивность обнаружены в листьях тополя. Самым чувствительным параметром оказалась величина коэффициента нефотохимического тушения флуоресценции qN, повышавшаяся после обработки углеводородами в 2—5 раз у саженцев разных видов. Безызлучательная диссипация энергии возбуждения является, вероятно, основным механизмом защиты фотосинтетических мембран в условиях химического стресса.

1. H. Y. Lee, W. S. Chow, Y-N. Hong. Physiologia Plantarum. 105 (1999) 377—384

2. K. Rohachek, M. Bartak. Photosynthetica. 37 (1999) 339—363

3. В. Н. Гольцев, Х. М. Каладжи, М. А. Кузманова, С. И. Аллахвердиев. Переменная и замедленная флуоресценция хлорофилла а – теоретические основы и практическое приложе-ние в исследовании растений, Ижевск, Институт компьютерных исследований (2014) 1—220

4. D. M. Kramer, G. Johnson, O. Kiirats, G. E. Edwards. Photosynthesis Reseach. 79 (2004) 209—218

5. G. H. Krause, E. Weis. Annu. Rev. Plant Physiol. Mol. Biol. 42 (1991) 313—349

6. U. Schreiber, U. Schliwa, W. Bilger. Photosynthesis Research 10 (1986) 51—62

7. В. А. Шувалов. Первичное преобразование световой энергии при фотосинтезе, Москва, Наука (1990) 1—208

8. Ch. D. P. Duffy, A. V. Ruban. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology, 152 (2015) 215—226

9. Е. Г. Тюлькова, Г. Е. Савченко, Л. Ф. Кабашникова. Известия РАН. Серия биологиче-ская, 6 (2023)

10. Dual-PAM-100 Measuring system. Instrument Description and Instructions for users, Germa-ny, Heinz Walz GmbH (2006) 1—87

11. А. Murkowski. Oddziaływanie czynnikow stresowych na luminescencję chlorofilu w aparacie fotosyntetycznym roślin uprawnych, Lublin, Instytut Agrofizyki im. Bohdana Dobrzańskiego PAN (2002) 94—116

12. M. Havaux. Plant Cell Environ., 16 (1993) 461—467

13. An introduction to fluorescence measurements with the plant efficiency analyser (PEA), England, Hansatech Instruments Ltd. http://www.hansatechinstruments.co.uk.

14. R. J. Strasser, M. Tsimilli-Michael, S. Qiang, V. Goltsev. Biochim. Biophys. Acta., 1797 (2010) 1313—1326

15. R. M. J. Reigosa, O. Weiss. Fluorescence techniques, Acad. Publ. (2001) 155—171

16. Д. Ю. Корнеев. Информационные возможности метода индукции флуоресценции хло-рофилла, Киев, Альтерпресс (2002) 150—180

17. B. Genty, J.-M. Briantais, N.R. Baker. Biochim. Biophys. Acta, 990 (1989) 87—92

18. M. J. Fryer, J. R. Andrews, K. Oxborough, D. A. Blowers, N. R. Baker. Plant Physiol., 116 (1998) 571—580

19. Н. К. Lichenthaler, С. Buschmann. Current Protocols in Food Analytical Chemistry, John Wiley&Sons (2001) F4.3.1—F4.3.8.

20. M. Kalaji, A. Rutkowska. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol., 496 (2004) 545—558

21. Л. Ф. Кабашникова, Л. М. Абрамчик. Докл. Нац. акад. наук Беларуси, 6 (2017) 66

22. X-D. Huang, L. F., Zeiler, D. G. Dixon, B. M. Greenberg. Ecotoxicology and Environmental Safety, 35 (1996) 190—197