Фотофизические свойства индотрикарбоцианиновых красителей при комплесообразовании с липид-переносящим белком Ns-LTP1

Исследовано взаимодействие индотрикарбоцианиновых красителей с липид-переносящим белком Ns-LTP1 в натрий-калиевом фосфатном буфере с рН 7.4 (ФСБ). Показано, что ортофениленовый мостик с хлором в мезоположении красителя неэффективен в качестве линкера в отношении белковых макромолекул, которые не имеют свободного остатка цистеина. Для получения комплекса индотрикарбоцианинового красителя с белком Ns-LTP1 осуществлена модификация индотрикарбоцианинового красителя в N-гидроксисукцинимидный эфир. В результате смешивания в двухфазной системе белка в ФСБ и активированного эфира красителя в 1,2-дихлорэтане получен комплекс молекул красителя с белком Ns-LTP1. При образовании комплекса наблюдается увеличение полуширины спектра поглощения с 56 до 61 нм, длительности затухания флуоресценции с 0.3 до 0.5 нс и степени поляризации с 27 до 31 %. Установлено, что соляная кислота при концентрациях, эквивалентных ее содержанию в желудочном соке (0.1—0.5 %), приводит к необратимой деструкции красителя. При терапии эрозивно-язвенных поражений с пероральным введением комплекса могут быть использованы капсулы, которые выдерживают кислотность желудочного сока и растворяются в кишечнике.

1. П. И. Толстых, В. А. Дербенев, И. Ю. Кулешов, А. М. Азимшоев, О. Б. Тамразова, А. С. Романова, Т. И. Караханов, А. Б. Соловьева. Хирургия. Журнал им. Н. И. Пирогова, № 12 (2010) 17—22

2. А. В. Ищук, С. И. Леонович. Новости хирургии, 16, № 1 (2008) 44—54

3. T. Dai, Y. Y. Huang, M. R. Hamblin. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy, 6, N 3-4 (2009) 170—188, https://doi.org/10.1016/j.pdpdt.2009.10.008

4. R. E. Saxton, M. Huang, C. Foote. Proc. Annu. Meet. Am. Assoc. Cancer Res., 34 (1993) A2131

5. G. S. Lipshutz, D. J. Castro, R. E. Saxton, R. P. Haugland, J. Soudant. Laryngoscope, 104, N 8 (1994) 996—1002, https://doi.org/10.1288/00005537-199408000-00014

6. A. R. Oseroff, D. Ohuoha, G. Ara, D. McAuliffe, J. Foley, L. Cincotta. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 83 (1986) 9729—9733, https://doi.org/10.1073/pnas.83.24.9729

7. E. Delaey, F. van Laar, D. De. Vos, A. Kamuhabwa, P. Jacobs, P. de Witte. J. Photochem. Photobiol. B: Biol., 55 (2000) 27—36, https://doi.org/10.1073/pnas.83.24.9729

8. Y. P. Istomin, E. N. Alexandrova, E. A. Zhavrid, E. S. Voropay, M. P. Samtsov, K. N. Kaplevsky, A. P. Lugovsky, A. А. Lugovsky. Exp. Oncology, 28, N 1 (2006) 80—82

9. М. П. Самцов, Е. С. Воропай, К. Н. Каплевский, Д. Г. Мельников, Л. С. Ляшенко, Ю. П. Истомин. Журн. прикл. спектр., 76, № 4 (2009) 576—582 [M. P. Samtsov, E. S. Voropay, K. N. Kaplevsky, D. G. Melnikau, L. S. Lyashenko, Yu. P. Istomin. J. Appl. Spectr., 76 (2009) 547—553]

10. M. Levitus, S. Ranjit. Q. Rev. Biophys., 44, № 1 (2011) 123—151, https://doi.org/10.1017/S0033583510000247

11. R. K. Pandey, N. James, Y. Chen, M. P. Dobhal. Top Heterocycl. Chem., 14 (2008) 41—74, https://doi.org/10.1007/7081_2008_113

12. A. Thibon, V. C. Pierre. Anal. Bioanal. Chem., 394 (2009) 107—120, https://doi.org/10.1007/s00216009-2683-2

13. H. E. Rajapakse, D. R. Reddy, S. Mohandessi, N. G. Butlin, L. W. Miller. Angew. Chem. Int., 48 (2009) 4990—4992, https://doi.org/10.1002/ange.200900858

14. Е. С. Воропай, М. П. Самцов, А. П. Луговский, А. А. Луговский, Т. С. Ермакова, Л. П. Титов, Т. Н. Бакаева. Здравоохранение, № 11 (2006) 45—47

15. L. M. Lichtenberger, L. A. Graziani, E. J. Dial, B. D. Butler, B. A. Hills. Science, 219, N 4590 (1983) 1327—1329, https://doi.org/10.1126/science.6828859

16. Ю. И. Ощепкова, О. Н. Вешкурова, Е. А. Рогожин, А. X. Мусолямов, А. Н. Смирнов, Т. И. Одинцова, Ц. А. Егоров, Е. В. Гришин, Ш. И. Салихов. Биоорг. химия, 35, № 3 (2009) 344—349

17. Д. А. Аманликова, Ю. И. Ощепкова. Хим.-фарм. журн., 55, № 7 (2021) 25—29, https://doi.org/10.30906/0023-1134-2021-55-7-25-29

18. E. S. Voropay, M. P. Samtsov, A. P. Lugovsky, E. A. Zhavrid, E. N. Alexandrova, Yu. P. Istomun, I. N. Zhuravkin. Exp. Oncol., 19 (1997) 56—60

19. Д. С. Тарасов, М. П. Самцов, Н. Н. Красноперов. Журн. Бел. гос. ун-та. Физика, № 2 (2022) 4—11, https://doi.org/10.33581/2520-2243-2022-2-4-11

20. Д. С. Тарасов, М. П. Самцов, И. И. Хлудеев, Е. В. Малюшкова, И. В. Семак. Журн. прикл. спектр., 89, № 5 (2022) 605—613, https://doi.org/10.47612/0514-7506-2022-89-5-605-613

21. М. П. Самцов, Д. С. Тарасов, Е. В. Малюшкова, И. И. Хлудеев, А. П. Луговский, И. В. Семак. Актуальные вопросы биологической физики и химии, 6, № 3 (2021) 499—504

22. P. L. Southwick, L. A. Ernst, E. W. Tauriello, S. R. Parker, R. B. Mujumdar, S. R. Mujumdar, H. A. Clever, A. S. Waggoner. Cytometry: J. Int. Soc. Analyt. Cytology, 11, N 3 (1990) 418—430, https://doi.org/10.1002/cyto.990110313

23. S. R. Mujumdar, R. B. Mujumdar, C. M. Grant, A. S. Waggoner. Bioconjugate Chem., 7, N 3 (1996) 356—362, https://doi.org/10.1021/bc960021b

24. А. Гордон, Р. Форд. Спутник химика, Москва, Мир (1976)

25. Н. В. Белько, М. П. Самцов, А. П. Луговский. Журн. Бел. гос. ун-та. Физика, № 2 (2020) 19—27, https://doi.org/10.33581/2520-2243-2020-2-19-27