УФ-спектрофотометрический метод производной первого порядка для определения метронидазола в присутствии повидон-йода в дерматологическом препарате

Для определения _{стабильности} метронидазола в присутствии повидон-йода в дерматологических препаратах разработан УФ-спектрофотометрический метод производной первого порядка, который обеспечивает улучшенное разрешение перекрывающихся спектров. Получено λ _max = 319 нм для метронидазола и λ _max = 235 нм для повидон-йода, длины волн обнаружения первого порядка — 298 и 221 нм для метронидазола и повидон-йода. Закон Бера соблюдался в диапазоне концентраций 5–45 мкг/мл с R² = 0.999 и 0.9967 для метронидазола и повидон-йода при использовании дистиллированной воды в качестве экономичного растворителя. Разработанный метод проверен на точность, прецизионность, надежность, найдены предел количественного определения и предел обнаружения. Установлены минимальные диапазоны внутридневных колебаний и колебаний в течение нескольких дней, составляющие <2% относительного стандартного отклонения. Процент восстановления с использованием метода отвечает характеристикам, указанным на этикетке, и находится в диапазоне 100.22–101%, что соответствует руководящим принципам Международной конференции по гармонизации для принудительной деградации. Представленный метод производных первого порядка прост, экономичен, безопасен, точен и пригоден для прогнозирования стабильности лекарственных средств в коммерческих препаратах

1. S. Pandey, R. Pandey, S. S. Shukla, Indian J. Pharm. Ed. Res., 55, No. 1, 249–255 (2021).

2. A. Parmar, S. Sharma, TrAC Trends Anal. Chem., 77, 44–53 (2016)

3. British Pharmacopoeia, British Pharmacopoeia Commission, Monograph, 0675 (2007).

4. K. D. Tripathi. Antiprotozoal Drugs. Essentials of Pharmacology, 5th ed., 750–753 (2003).

5. A. Lorenzo, M. E. Mothe, C. Sanz, Huidobro N. Ruiz, A. Diambra, M. I. Ribo et al., Pak. J. Soc. Sci., 4, No. 1, 82–104 (2007).

6. G. Mary, N. Balasubrahmanian, K. S. Nagaraja, Chem. Pharm. Bull. (Tokyo), 56, No. 7, 888–893 (2008).

7. M. P. Arena, M. D. Porter, J. S. Fritz, Anal. Chem., 74, No. 1, 185–190 (2002).

8. P. Tavlarakis, J. J. Urban, N. Snow, J. Chromatogr. Sci., 49, No. 6, 457–462 (2011).

9. A. M. Frasey, B. G. Anne, M. P. Pouget, M. Vennat, B. Lartigue, C. Galmier, Micro Acta, 144, 171–176 (2004).

10. C. Akay, S. A. Ozkan, Z. Senturk, S. Cevheroglu, Farmaco, 57, No. 11, 953–957 (2003).

11. M. F. Rizk, F. Ibrahim Belal, S. Ahmed, Z. A. Shebribah, J. Pharm. Biomed. Anal., 27, No. 5, 813–820 (2002).

12. S. Bollo, L. J. Nunez-Vergara, J. A. Squella, J. Elec. Chem., 562, No. 1, 9–14 (2004).

13. M. L. Loke, J. Fornelund, B. Halling Sorensen, Chemosphere, 48, 351 (2004).

14. V. Ellenrieder, W. Boeck, C. Richer, R. Marre, G. Adler, B. Glasbrenner, Scan. J. Gas., 34, 750 (1999).

15. P. Nagaraja, K. R. Sunitha, R. A. Vasantha, H. S. Yathirajan, J. Pharm. Biomed. Anal., 28, 527–535 (2002).

16. P. Parimoo, C. V. N. Prasad, A. Gautam, Int. J. Pharm., 134, No. 22, 231–234 (1996).

17. P. Parimoo, C. V. N. Prasad, R. Vineeth, J. Pharm. Biomed. Anal., 14, 389–393 (1996).

18. H. Chen, Z. Gong, Z. Zhang, J. Pharm. Biomed. Anal., 41, 1412–1417 (2006).

19. T. Karuna, K. Neelima, G. Venkateshwarlu, P. Y. Swamy, J. Sci. Ind. Res., 65, 808–811 (2006).