УЛУЧШЕННЫЕ С ПОМОЩЬЮ β-ЦИКЛОДЕКСТРИНА СПЕКТРОФЛУОРОМЕТРИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ЗАМЕЩЕННЫХ БЕНЗАМИДОВ (ИТОПРИДА ГИДРОХЛОРИДА, АЛИЗАПPИДА И МОЗАПРИДА ЦИТРАТА) В ФАРМАЦЕВТИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТАХ

Разработаны и оптимизированы два спектрофлуорометрических метода определения в лекарствах замещенных бензамидов - итоприда гидрохлорида (ITO), ализаприда (ALI) и мозаприда цитрата (MOS). Первый метод основан на измерении относительной интенсивности флуоресценции водного раствора данных препаратов в отсутствие метил-β-циклодекстрина на l = 380±2 нм при возбуждении с l = 310 нм. Диапазоны линейности составляют 0.05-10, 0.1-10 и 0.1-10 мкг/мл при усредненном значении восстановления 100.04 ± 0.21, 100.06 ± 0.65 и 100.08 ± 0.26 для ITO, ALI и MOS соответственно. Второй метод основан на существенном усилении интенсивностей флуоресценции препаратов при формировании их комплекса с метил-β-циклодекстрином в водном растворе: pH раствора равен 6.6 в случае ITO и 7.2 в случае ALI и MOS. Интенсивности флуоресценции образованных комплексов измерены на длине волны 420±2 нм при возбуждении излучением c l = 310 нм. Получены диапазоны линейности 5-35, 3-15 и 2-30 нг/мл при среднем значении восстановления 100.22 ± 30, 100.12 ± 0.24, 100.30 ± 0.44 и пределе детектирования 1.98, 1.32, 0.66 нг/мл для ITO, ALI и MOS соответственно. Установлена 1:1 стехиометрия для комплексов с β-циклодекстрином. Константы ассоциации и свободная энергия Гиббса рассчитаны с помощью уравнения Бенеши-Хильдебранда. Полученные результаты согласуются с данными других авторов.

бензамиды, спетрофлуориметрия, метил-β-циклодекстрин, уравнение Бенеши-Хильдебранда, свободная энергия Гиббса, константа ассоциации, benzamides, spectrofluorometry, methyl-β-cyclodextrin, Benesi-Hildebrand equation, Gibbs free energy, association constant

1. S. C. Sweetman, The Martindale: The Complete Drug Reference, 38th ed., The Pharmacutical Press, London, UK, 1815, 1850, 1865 (2014).

2. E. Scarpellihi, R. Vos, K. Blondeau, V. Boecxstaens, R. Farre, J. Tack, Alimment. Pharmacol. Ther., 33, 99-105 (2011).

3. G. Holtmann, N. J. Talley, T. Liebregts, B. Adam, C. Parow, N. Engl. J. Med., 354, 832-40 (2006).

4. T. Tsubouchi, T. Saito, F. Mizutani, T. Yamauchi, Y. Iwanaga, J. Pharmacol. Exper. Ther., 306, 787-793 (2003).

5. M. T. Ragab, M. K. Abd El-Rahman, N. K. Ramadan, N. A. El-Ragehy, B. A. El-Zeany, Talanta, 138, 28-35 (2015).

6. X. U. Hun, Z. Zhang, Sens. Actuators B, 131, 403-410 (2008).

7. D. Bageshwar, V. Khanvilkar, V. Kadam, J. Pharm. Anal., 1, 275-283 (2011).

8. A. Suganthi, S. John, T. K. Ravi, Int. J. Plant. Sci., 70, 366-368 (2008).

9. N. K. Ramadan, N. A. El-Ragehy, M. T. Ragab, B. A. El-Zeany, Spectrochim. Acta A, 137, 463-470 (2015).

10. H. M. Mohamed, Spectrochim. Acta A, 136, 1308-1315 (2014).

11. A. M. Yehia, Spectrochim. Acta A, 109, 193-200 (2013).

12. S. U. Zate, P. I. Kothawade, J. W. Gajbe, A. S. Pramod, S. S. Boraste, Int. J. Drug Deliv., 2, 340-343 (2010).

13. B. Choudhary, A. Goyaland, S. L. Khokra, Int. J. Plant. Sci., 1, 159-162 (2009).

14. S. S. Sabnis, N. D. Dhavale, V. Y. Jadhavand, S. V. Gandhi, Spectrochim. Acta A, 69, 849-852 (2008).

15. P. Pattanayak, R. Sharma, S. C. Chaturvedi, Anal. Lett., 40, 2288-2294 (2007).

16. F. Ibrahim, J. J. Nasr, Luminescence, 31, 255-263 (2016).

17. S. S. Perumal, S. P. Ekambaram, S. Raja, J. Food Drug Anal., 22, 520-526 (2014).

18. D. Umamaheswari, M. Kumar, B. Jayakar, R. Chatakonda, J. Chem. Pharm. Res., 2, 399-417 (2010).

19. Y. Sun, Z. Zhang, Z. Xi, Z. Shi, W. Tian, Anal. Chim. Acta, 648, 174-177 (2009).

20. J. Ma, L.-H. Yuan, M.-J. Ding, J. Zhang, Q. Zhang, Q.-W. Xu, X.-M. Zhou, J. Pharmacol. Res., 59, 189-193 (2009).

21. H.-W. Lee, J.-H. Seo, S.-K. Choi, K.-T. Lee, Anal. Chim. Acta, 583, 118-123 (2007).

22. N. Kaul, H. Agrawal, P. Maske, J. R. Rao, K. R. Mahadik, S. S. Kadam, J. Sep. Sci., 28, 1566-1576 (2005).

23. M. I. Walash, F. Ibrahim, M. I. Eid, S. A. El Abass, J. Fluores., 23, 1293-1300 (2013).

24. H. E. Zaazaa, E. S. Elzanfaly, A. T. Soudi, M. Y. Salem, RSC Adv., 5, 76377-76382 (2015).

25. A. P. de Jong, A. J. Wittebrood, W. M. du Châtinier, J. Bron, J. Chromatogr. A, 419, 233-242 (1987).

26. I. Tamaro, S. Aprile, B. G. B. Giovenzana, G.Grosa, J. Pharm. Biomed. Anal., 51, 1024-1031 (2010).

27. M. Buna, J. J. Aaron, P. Prognon, G. Mahuzier, Analyst, 121, 1551-1556 (1996).

28. Y. R. Kumar, J. Moses Babu, M. S. Sarma, B. Seshidhar, S. S. Reddy, G. S. Reddy, K. Vyas, J. Pharm. Biomed. Anal., 32, 361-368 (2003).

29. Y. S. Krishnaiah, T. K. Murthy, D. G. Sankar, V. Satyanarayana, Anal. Sci., 18, 1269-1271 (2002).

30. Y. S. Krishnaiah, T. K. Murthy, D. G. Sankar, V. Satyanarayana, Pharmazie, 57, 814-816 (2002).

31. I. Yokoyama, Y. Mizuki,T. Y Amaguchi, T. Fujii, J. Pharm. Biomed. Anal., 5, 1527-1535 (1997).

32. Y. Z. F. Eman, M. A. Zayed, M. M. Omar, E. A. E. Sally, G. M. Gehad, Arab. J. Chem., 5, 375-382 (2012).

33. A. M. Yehia, Spectrochim. Acta A, 109, 193-200 (2013).

34. M. A. Hegazy, A. M. Yehia, A. A. Mostafa, Drug Test. Anal., 4, 104-115 (2012).

35. D. Aleksandrova, Y. Scripinets, A. Yegorova, Acta Pol. Pharm., 66, 605-610 (2009).

36. S. J. Rajput, M. G. Sankalia, F. T. Patel, Indian J. Pharm. Sci., 67, 582-585 (2005).

37. A. Magnúsdóttir, M. Másson, T. Loftsson, J. Incl. Phenom. Macroc. Chem., 44, 213-218 (2002).

38. N. D. Aurora, A. Manuel, S. F. Lorenzo, S. Francisco García, Anal. Lett., 41, 1802-1810 (2008).

39. L. J. Cline Love, M. Lynn Grayeski, J. Noroski, R. Weinberger, Anal. Chim. Acta, 170, 3-12 (1985).

40. F. Ibrahim, M. K. S. El-Din, M. I. Eid, M. E. K. Wahba. Chem. Cent. J., 5,11 (2011).

41. D. A. Lerner, M. A. Martin, Analysis, 28, 649-663 (2000).

42. A. N. Martin, J. S. Warbrick, A. Cammarata, Physical Pharmacy: Physical Chemical Principles in the Pharmaceutical Sciences, 3rd ed., Lea & Febiger, Philadelphia (1983).

43. ICHQ2B (R1): Validation of Analytical Procedures: Text and Methodology (2005).