Preview

Журнал прикладной спектроскопии

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

ОБНАРУЖЕНИЕ ОСТАТКОВ КАРБЕНДАЗИМА В ВОДНЫХ ОБРАЗЦАХ С ПОМОЩЬЮ ТУШЕНИЯ ФЛУОРЕСЦЕНЦИИ РАСТИТЕЛЬНОЙ ЭСТЕРАЗЫ

Полный текст:

Аннотация

Предложен и апробирован метод определения остатков карбендазима в водных образцах, основанный на ингибировании растительной эстеразы из пестицидов. Предел обнаружения вещества с помощью данного метода составляет 0.105 мкМ, при наличии в образце других веществ с аналогичными свойствами 0.105-41.84 мкМ. Предложен механизм взаимодействия: карбендазим связывается с растительной эстеразой посредством силы Ван-дер-Ваальса и водородной связи в единственном месте связывания посредством экзотермической реакции. Метод использован для анализа остатков карбендазима в различных водных образцах. Получено хорошее согласие результатов с традиционно используемым методом, основанным на применении эталона.

Об авторах

L. . Dong
Cычуаньский научно-инженерный университет
Россия


Y. . Ren
Колледж биоинженерии, Чунцинский университет
Россия


J. . Li
Колледж биоинженерии, Чунцинский университет
Россия


H. . Wu
Колледж биоинженерии, Чунцинский университет
Россия


C. . Hou
Колледж биоинженерии, Чунцинский университет
Россия


H. . Fa
Колледж химии и химической инженерии, Чунцинский университет
Россия


M. . Yang
Колледж биоинженерии, Чунцинский университет
Россия


S. . Zhang
Колледж биоинженерии, Чунцинский университет; Национальный инженерно-исследовательский центр твердотельного пивоварения Luzhou Laojiao Group Co. Ltd
Россия


D. . Huo
Колледж биоинженерии, Чунцинский университет
Россия


Список литературы

1. L. Pareja, A. R. Fernandez-Alba, V. Cesio, H. Heinzen, Trac-Trend. Anal. Chem., 30, 270-291 (2011).

2. V. Janaki Devi, N. Nagarani, M. Yokesh Babu, A. K. Kumaraguru, C. M. Ramakritinan, Chemosphere, 90, 1158-1166 (2013).

3. M. Asensio-Ramos, J. Hernandez-Borges, G. Gonzalez-Hernandez, M. Angel Rodriguez-Delgado, Electrophoresis, 33, 2184-2191 (2012).

4. A. Moral, M. Dolores Sicilia, S. Rubio, Anal. Chim. Acta, 650, 207-213 (2009).

5. C. J. Sinclair, A. B. A. Boxall, S. A. Parsons, M. R. Thomas, Environ. Sci. Technol., 40, 7283-7289 (2006). 514-8

6. S. C. Utture, K. Banerjee, S. Dasgupta, S. H. Patil, M. R. Jadhav, S. S. Wagh, S. S. Kolekar, M. A. Anuse, P. G. Adsule, J. Agric. Food Chem., 59, 7866-7873 (2011).

7. M. del Pozo, M. Alonso, L. Hernandez, C. Quintana, Electroanalysis, 23, 189-195 (2011).

8. A. Nougadere, V. Sirot, A. Kadar, A. Fastier, E. Truchot, C. Vergnet, F. Hommet, J. Bayle, P. Gros, J.-C. Leblanc, Environ. Int., 45, 135-150 (2012).

9. Q. Subhani, Z. Huang, Z. Zhu, Y. Zhu, Talanta, 116, 127-132 (2013).

10. M. J. Jonker, A. M. Piskiewicz, N. Ivorra, J. E. Kammenga, Environ. Toxicol. Chem., 23, 1529-1537 (2004).

11. J. Dominguez-Alvarez, M. Mateos-Vivas, D. Garcia-Gomez, E. Rodriguez-Gonzalo, R. Carabias-Martinez, J. Chromatogr. A, 1278, 166-174 (2013).

12. M. del Pozo, L. Hernandez, C. Quintana, Talanta, 81, 1542-1546 (2010).

13. S. Luo, Y. Wu, H. Gou, Ionics, 19, 673-680 (2013).

14. Eurosurveillance editorial, Eur. Communic. Dis. Bull., 15, 19641 (2010).

15. M. J. Rodriguez-Cuesta, R. Boque, F. X. Rius, D. P. Zamora, M. M. Galera, A. G. Frenich, Anal. Chim. Acta, 491, 47-56 (2003).

16. J. F. G. Reyes, P. O. Barrales, A. M. Diaz, Anal. Chim. Acta, 493, 35-45 (2003).

17. C. L. da Silva, E. C. de Lima, M. F. M. Tavares, J. Chromatogr. A, 1014, 109-116 (2003).

18. K. P. Prousalis, D. A. Polygenis, A. Syrokou, F. N. Lamari, T. Tsegenidis, Anal. Bioanal. Chem., 379, 458-463 (2004).

19. C. Lesueur, M. Gartner, A. Mentler, M. Fuerhacker, Talanta, 75, 284-293 (2008).

20. R. Halko, C. P. Sanz, Z. S. Ferrera, J. J. S. Rodriguez, Chromatographia, 60, 151-156 (2004).

21. E. Rodriguez-Gonzalo, J. Dominguez-Alvarez, L. Ruano-Miguel, R. Carabias-Martinez, Electrophoresis, 29, 4066-4077 (2008).

22. S. B. Singh, G. D. Foster, S. U. Khan, J. Chromatogr. A, 1148, 152-157 (2007).

23. A. D. Strickland, C. A. Batt, Anal. Chem., 81, 2895-2903 (2009).

24. Y. Guo, S. Guo, J. Li, E. Wang, S. Dong, Talanta, 84, 60-64 (2011).

25. L. Yang, D. Huo, C. Hou, K. He, F. Lv, H. Fa, X. Luo, Process Biochem., 45, 1664-1671 (2010).

26. Z. Zheng, X. Li, Z. Dai, S. Liu, Z. Tang, J. Mater. Chem., 21, 16955-16962 (2011).

27. A. M. Ashafi, J. Dordevic, V. Guzsvany, T. Trtic-Petrovic, K. Vytras, XXXII Moderni Electrochemicke Metody, 10-13 (2012).

28. M. Wang, R. Feng, J. Shen, H. Chen, Z. Zeng, Bull. Korean Chem. Soc., 33, 2224-2228 (2012).

29. Y. J. Wu, W. Zhu, Y. Y. Cheng, Chin. J. Anal. Chem., 34, 235-238 (2006).

30. C.-J. Hou, K. He, L.-M. Yang, D.-Q. Huo, M. Yang, S. Huang, L. Zhang, C.-H. Shen, World J. Microbiol. Biotechnol., 28, 541-548 (2012).

31. H. A. Azab, A. Duerkop, E. M. Saad, F. K. Awad, R. M. Abd El Aal, R. M. Kamel, Spectrochim. Acta A: Mol. Biomol. Spectrosc., 97, 915-922 (2012).

32. Y. J. Hu, Y. Liu, R. M. Zhao, J. X. Dong, S. S. Qu, J. Photochem. Photobiol. A: Chemistry, 179, 324-329 (2006).

33. L. Yang, D. Huo, C. Hou, M. Yang, H. Fa, X. Luo, Spectrochim. Acta A: Mol. Biomol. Spectrosc., 78, 1349-1355 (2011).

34. J. Kang, Y. Liu, M. X. Xie, S. Li, M. Jiang, Y. D. Wang, Biochim. Biophys. Acta: General Subjects, 1674, 205-214 (2004).

35. J. Gomis, A. Arques, A. M. Amat, M. L. Marin, M. A. Miranda, Appl. Catal. B: Environ., 123, 208-213 (2012).


Для цитирования:


Dong L..., Ren Y..., Li J..., Wu H..., Hou C..., Fa H..., Yang M..., Zhang S..., Huo D... ОБНАРУЖЕНИЕ ОСТАТКОВ КАРБЕНДАЗИМА В ВОДНЫХ ОБРАЗЦАХ С ПОМОЩЬЮ ТУШЕНИЯ ФЛУОРЕСЦЕНЦИИ РАСТИТЕЛЬНОЙ ЭСТЕРАЗЫ. Журнал прикладной спектроскопии. 2018;85(3):514(1)-514(8).

For citation:


Dong L..., Ren Y..., Li J..., Wu H..., Hou C..., Fa H..., Yang M..., Zhang S..., Huo D... DETECTION OF CARBENDAZIM RESIDUES IN AQUEOUS SAMPLES BY FLUORESCENT QUENCHING OF PLANT ESTERASE. Zhurnal Prikladnoii Spektroskopii. 2018;85(3):514(1)-514(8). (In Russ.)

Просмотров: 71


ISSN 0514-7506 (Print)