КРАСНОЕ И ЖЕЛТОЕ СВЕЧЕНИЕ СИНТЕЗИРОВАННЫХ МЕТОДОМ СОВМЕСТНОГО ОСАЖДЕНИЯ ОДНОКОМПОНЕНТНЫХ ЛЮМИНОФОРОВ НА ОСНОВЕ СОЛЕГИРОВАННОГО ИОНАМИ Eu³⁺/Dy³⁺ ГИДРОКСИАПАТИТА/b-ТРИКАЛЬЦИЯ ФОСФАТА

Представлены результаты синтеза наноструктур однокомпонентных люминофоров на основе солегированного ионами Eu³⁺ и Dy³⁺ гидроксиапатита (ГА)/b-трикальция фосфата (ТКФ), обеспечивающих интенсивное красное и желтое свечение, зависящее от температуры и длительности отжига. Морфологические исследования показали, что люминофоры обладают нанопроволочной структурой. Интенсивность их фотолюминесценции возрастает с температурой и длительностью отжига. Для полученных люминофоров наблюдалась типичная для Eu³⁺ и Dy³⁺ люминесценция с максимумами при 610 и 572 нм, которая оказалась более эффективной у подверженных отжигу образцов ГА/ТКФ, солегированных ионами Eu³⁺ /Dy³⁺ , чем у только что синтезированных образцов. Показана перспективность применения солегированных ионами Eu³⁺ и Dy³⁺ ГА/ТКФ наноструктур в качестве экологически безвредных люминофоров.

диспрозий, люминесценция, гидроксиапатит, европий, нанолюминофор, нанобиолюминофор, dysprosium, luminescence, hydroxyapatite, europium, nanophosphor, nanobiophosphor

1. Y. J. Zhang, Z. Y. Mao, D. J. Wang, J. Zhao, Mater. Res. Bull., 67, 1-4 (2015).

2. L. Ma, D. J. Wang, Z. Y. Mao, Q. F. Lu, Z. H. Yuan, Appl. Phys. Lett., 93, 144101-144101-3 (2008).

3. J. Chen, C. Guo, Z. Yang, T. Li, J. Zhao, J. Am. Ceram. Soc., 99, 218-225 (2016 )

4. A. Shimada, Y. Taniguchi, J. Photochem. Photobiol. B: Biol., 104, 399-404 (2011). 680-6

5. I. Vänninen, D. M. Pinto, A. I. Nissinen, N. S. Johansen, L. Shipp, Annu. Appl. Biol., 157, 393-414 (2010).

6. Y. Wang, K. M. Folta, Am. J. Bot., 100, 70-78 (2013).

7. R. M. Klein, P. C. Edsall, Photochem. Photobiol., 6, 841-850 (1967).

8. U. V. Pedmale, S. C. Huang, M. Zander, B. J. Cole, J. Hetzel, K. Ljung, P. A. B. Reis, P. Sridevi, K. Nito, J. R. Nery, J. R. Ecker, J. Chory, Cell, 164, 1-13 (2016).

9. A. Takemiya, S. I. Inoue, M. Doi, T. Kinoshita, K. I. Shimazaki, The Plant Cell, 17, 1120-1127 (2005).

10. H. A. H. Graham, D. R. Decoteau, Sci. Horticulturae, 69, 41-49 (1997).

11. K. E. Gerhardt, M. A. Lampi, B. M. Greenberg, Photochem. Photobiol., 84, 1445-1454 (2008).

12. G. Tamulaitis, P. Duchovskis, Z. Bliznikas, K. Breiv, R. Ulinskait, A. Brazaityt, A. Novičkovas, A. Zukauskas, J. Phys. D: Appl. Phys., 38, 3182-3187 (2005).

13. S. D. Gupta, B. Jatothu, Plant Biotechnol. Rep., 7, 211-220 (2013).

14. N. Yeh, J. P. Chung, Renew. Sustain. Energ. Rev., 13, 2175-2180 (2009).

15. L. Poulet, G. D. Massa, R. C. Morrow, C. M. Bourget, R. M. Wheeler, C. A. Mitchell, Lif. Sci. Space Res., 2, 43-53 (2014).

16. Y. Xie, W. He, F. Li, T. S. H. Perera, L. Gan, Y. Han, X. Wang, S. Li, H. Dai, ACS Appl. Mater. Interfaces, 27, 10212-10219 (2016).

17. K. Hasna, S. S. Kumar, M. Komath, M. R.Varma, M. K. Jayaraj, K. R. Kumar, Phys. Chem. Chem. Phys., 15, 8106-8111 (2013).

18. A. K. S. Lafarga, F. P. P. Moisés, A. Gurinov, G. G. Ortiz, G. G. C. Arízaga, Mater. Sci. Eng. C, 48, 541-547 (2015).

19. C. Rosticher, B. Viana, T. Maldiney, C. Richard, C. Chanéac, J. Lumin., 170, 460-466 (2016).

20. V.H. Pham, N. N. Trung, Mater. Lett., 36, 359-361 (2014).

21. C. X. Thang, V. H. Pham, Mater. Sci. Eng. B, 197, 18-24 (2015).

22. T. C. Xuan, N. N. Trung, V. H. Pham, Optik, 126, 5019-5021 (2015).

23. Y. Han, X. Wang, H. Dai, S. Li, J. Lumin., 135, 281-287 (2013).

24. F. R. O. Silva, N. B. de Lima, A. H. A. Bressiani, L. C. Courrol, L. Gomes, Opt. Mater., 47, 135-142 (2015).

25. S. Huang, J. Zhu, K. Zhou, Mater. Res. Bull., 47, 24-28 (2012).