НАНОЧАСТИЦЫ ЗОЛОТА, ПОКРЫТЫЕ БРОМИДОМ ЦЕТИЛТРИМЕТИЛАММОНИЯ, КАК НОВЫЙ ЗОНД ДЛЯ СПЕКТРОФОТОМЕТРИЧЕСКОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ ГЕПАРИНА

Предложен спектрофотометрический метод определения концентрации гепарина в образцах плазмы крови человека, основанный на повышении интенсивности экстинкции наночастицами золота, покрытыми бромидом цетилтриметиламмония (БЦТА), в присутствии молекул гепарина. Сильное электростатическое взаимодействие положительно заряженных наночастиц золота с отрицательно заряженными молекулами гепарина вызывает заметное увеличение размера наночастиц золота, что приводит к резкому росту интенсивности в спектре поглощения наночастиц золота. При повышении концентрации гепарина растет интенсивность при l = 528 нм, поэтому возможно количественное определение содержания гепарина. При оптимальных условиях интенсивность поглощения линейно зависит от концентрации гепарина в диапазоне 0.18-11.98 ед./мл с пределом обнаружения 0.08 ед./мл.

определение содержания гепарина, покрытые бромидом цетилтриметиламмония наночастицы золота, спектр ослабления излучения, determination of heparin, CTAB-capped gold nanoparticles, extinction spectrum

1. A. L. Lehninger, D. L. Nelson, M. M. Cox, W. H. Freeman, Lehninger Principles of Biochemistry, 4th edn., New York (2005).

2. M. D. Freedman, J. Clin. Pharmacol., 32, 584-596 (1992).

3. K. L. Gemene, M. E. Meyerhoff, Anal. Chem., 82, 1612-1615 (2010).

4. J. Lei, J. Ding, Y. Chen, W. Qin, Anal. Chim. Acta, 858, 60-65 (2015).

5. L. Li, Y. Liang, Y. Liu, Anal. Biochem., 434, 242-246 (2013).

6. L. Tan, S. Yao, Q. Xie, Talanta, 71, 827-832 (2007).

7. T. Bříza, Z. Kejík, I. Císařová, J. Králová, P. Martásek, V. Král, Chem. Commun., 28, 1901-1903 (2008).

8. R. Cao, B. Li, Chem. Commun., 47, 2865-2867 (2011).

9. Y.-S. Cho, K. H. Ahn, J. Mater. Chem. B, 1, 1182-1189 (2013).

10. X. Fu, L. Chen, J. Li, Analyst, 137, 3653-3658 (2012).

11. Z. Chen, Z. Wang, X. Chen, H. Xu, J. Liu, J. Nanopart. Res., 15, 1930-1939 (2013).

12. Z. Liu, Q. Ma, X. Wang, Z. Lin, H. Zhang, L. Liu, X. Su, Biosens. Bioelectron., 54, 617-622 (2014).

13. H. Liu, P. Song, R. Wei, K. Li, A. Tong, Talanta, 118, 348-352 (2014).

14. J. Liu, G. Liu, W. Liu, Y. Wang, Biosens. Bioelectron., 64, 300-305 (2015).

15. Y. Cao, S. Shi, L. Wang, J. Yao, T. Yao, Biosens. Bioelectron., 55, 174-179 (2014).

16. X. Peng, Q. Long, H. Li, Y. Zhang, S. Yao, Sens. Actuators. B, 213, 131-138 (2015).

17. R. P. Patel, C. Narkowicz, G. A. Jacobson, Anal. Biochem., 387, 113-121 (2009).

18. N. Nath, A. Chilkoti, Anal. Chem., 74, 504-509 (2002).

19. X. Huang, M. A. El-Sayed, J. Adv. Res., 1, 13-28 (2010).

20. C. J. Murphy, A. M. Gole, S. E. Hunyadi, J. W. Stone, P. N. Sisco, A. Alkilany, B. E. Kinard, P. Hankins, Chem. Commun., 544-557 (2008).

21. A. Reza, A. S. M. Noor, M. Maarof, In Plasmonics - Principles and Applications, Ed. K. Y. Kim, InTech (2012).

22. J. Homola, S. S. Yee, G. Gauglitz, Sens. Actuators. B, 54, 3-15 (1999).

23. J. Homola, Anal. Bioanal. Chem., 377, 528-539 (2003).

24. R. Fenger, E. Fertitta, H. Kirmse, A. F. Thünemann, K. Rademann, Phys. Chem. Chem. Phys., 14, 9343-9349 (2012).

25. S. K. Ghosh, T. Pal, Chem. Rev., 107, 4797-4862 (2007).

26. M. Hu, J. Chen, Z.-Y. Li, L. Au, G. V. Hartland, X. Li, M. Marquez, Y. Xia, Chem. Soc. Rev., 35, 1084-1094 (2006).

27. X. Liu, M. Atwater, J. Wang, Q. Huo, Colloids Surf. B, 58, 3-7 (2007).

28. S. P. Liu, H. Q. Luo, H. Xu, N. B. Li, Spectrochim. Acta, A, 61, 861-867 (2005).

29. D. A. Lane, I. Björk, U. Lindahl, Heparin and Related Polysaccharides, Springer US (2013).

30. R. Zhan, Z. Fang, B. Liu, Anal. Chem., 82, 1326-1333 (2010).