Preview

Журнал прикладной спектроскопии

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

РАСПОЗНАВАНИЕ ЗАРАЖЕННЫХ ХРИЗАЛИДОВ ТУТОВОГО ШЕЛКОПРЯДА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СПЕКТРОСКОПИИ БЛИЖНЕГО ИК-ДИАПАЗОНА В СОЧЕТАНИИ С МНОГОМЕРНЫМ АНАЛИЗОМ ВО ВРЕМЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ Cordyceps militaris

Полный текст:

Аннотация

Ближняя ИК-спектроскопия использована для распознавания зараженных хризалидов тутового шелкопряда. Всего 105 хризалидов тутового шелкопряда (65 инфицированных и 40 незараженных) собрано в пекинской компании Shoucheng Agricultural Development Co., Ltd. Спектры в ближнем ИК-диапазоне получены из областей головы, груди, живота и задней части брюшка каждого хризалида тутового шелкопряда (как незараженных, так и инфицированных). Для идентификации незараженных и инфицированных хризалидов тутового шелкопряда использованы три метода предварительной обработки спектров и четыре модели распознавания. Результаты показывают, что модель, использующая дискриминантный анализ на основе частичных наименьших квадратов и спектры, обработанные методом мультипликативной коррекции рассеяния, имеет лучшие характеристики распознавания (точность прогнозирования калибровочного набора и набора прогнозирования 100 и 97.5%). Область головы оказалась наилучшим участком для распознавания незараженных и инфицированных хризалидов тутового шелкопряда. Неинфицированные и зараженные хризалиды шелкопряда могут быть успешно идентифицированы с помощью методов ближней ИК-спектроскопии при культивировании Cordyceps militaris.

Об авторах

Y. Zhang
Национальный исследовательский центр интеллектуальной техники для сельского хозяйства; Колледж оборудования сельскохозяйственной инженерии Хэнаньского университета науки и технологий
Китай

Пекин, 100097;

Лоян, 471003



X. Wang
Национальный исследовательский центр интеллектуальной техники для сельского хозяйства
Китай
Пекин, 100097


Ch. Wang
Национальный исследовательский центр интеллектуальной техники для сельского хозяйства
Китай
Пекин, 100097


Y. Zhou
Национальный исследовательский центр интеллектуальной техники для сельского хозяйства
Китай
Пекин, 100097


D. Pan
Национальный исследовательский центр интеллектуальной техники для сельского хозяйства
Китай
Пекин, 100097


B. Luo
Национальный исследовательский центр интеллектуальной техники для сельского хозяйства
Китай
Пекин, 100097


Список литературы

1. G. H. Sung, N. L. Hywel-Jones, J. M. Sung, J. J. Luangsaard, B. Shrestha, J. W. Spatafora, Stud. Mycol., 57, 50–59 (2007).

2. S. X. Bi, Y. S. Jing, Q. Q. Zhou, Food Funct., 9, No. 1, 279–293 (2018).

3. K. Nakamura, K. Shinozuka, N. Yoshikawaa, J. Pharmacol. Sci., 127, No. 1, 53–56 (2015).

4. Z. Y. Zhu, F. Liu, H. Gao, H. Sun, M. Meng, Y. M. Zhang, Int. J. Biol. Macromol. A, 93, 1090–1099 (2016).

5. X. W. Tian, Q. P. Song, M. He, Y. L. Lu, Y. C. Liu, L. S. Feng, Biosci. Biotech. Res. Commun., 9, No. 4, 596–602 (2016).

6. H. T. Fan, H. S. Lin, Chin. J. Chin. Mater. Med., 38, 2549–2552 (2013).

7. H. O. Kim, J. W. Yun, J. Appl. Microbiol., 99, 728–738 (2005).

8. Z. L. Zheng, C. H. Huang, C. Y. Mei, R. C. Han, J. Environ. Entomol., 33, 225–233 (2011).

9. R. R. M. Paterson, Phytochemistry, 69, 1469–1495 (2008).

10. Y. F. Han, Microbiol. China, 32, 1423–1428 (2009).

11. X. L. Chu, W. Z. Lu, Spectrosc. Spectr. Anal., 34, 2595–2605 (2014).

12. H. Z. Chen, L. L. Xu, G. Q. Tang, Q. Q. Song, Q. X. Feng, Food Anal. Methods, 9, 1–10 (2015).

13. Y. He, X. L. Li, J. Infrared Millim. Waves, 25, 192–194 (2006).

14. H. E. Tahir, X. B. Zou, T. T. Shen, J. Y. Shi, A. A. Mariod, Food Anal. Methods, 9, 2631–2641 (2016).

15. S. M. Pan, M. Tao, A. Q. Sun, T. M. Jin, Acta Entomol. Sin., 39, 360–365 (1996).

16. F. Dai, L.Wu, G. Ye, Y. Zhong, T. Hong, X. Huang, Trans. Chin. Soc. Agric. Mach., 46, No. 12, 280–284 (2015).

17. J. Engel, J. Gerretzen, E. Szymańska, J. Jansen, G. Downey, L. Blanchet, L. Buydens, TrAC Trends Anal. Chem., 50, 96–106 (2013).

18. R. Vašát, R. Kodešová, A. Klement, L. Borůvka, Geoderma, 298, 46–53 (2017).

19. Y. Zhao, J. Zhang, H. Jin, J. Zhang, T. Shen, Y. Wang, J. AOAC Int., 98, 22–26 (2015).

20. B. T. Borille, M. C. Marcelo, R. S. Ortiz, K. C. Mariotti, M. F. Ferrão, R. P. Limberger, Spectrochim. Acta A, 173, 318–323 (2016).

21. E. Teye, X. Huang, H. Dai, Q. Chen, Spectrochim. Acta A, 114, 183–189 (2013).

22. L. L. Tao, W. Huang, X. J. Yang, Z. Y. Cao, J. M. Deng, S. S. Wang, F. Y. Mei, M. W. Zhang, X. Zhang, Spectrosc. Spectr. Anal., 36, 2766–2773 (2016).

23. T. Koumbi-Mounanga, K. Groves, B. Leblon, G. Zhou, P. A. Cooper, Eur. J. Wood Prod., 73, 43–50 (2015).

24. F. Mabood, F. Jabeen, M. Ahmed, J. Hussain, S. A. A. Al Mashaykhi, Z. M. A. Al Rubaiey, S. Farooq, R. Boqué, L. Ali, Z. Hussain, A. Al-Harrasi, A. L. Khan, Z. Naureen, M. Idrees, S. Manzoor, Food Chem., 221, 746–750 (2017).


Для цитирования:


Zhang Y., Wang X., Wang C., Zhou Y., Pan D., Luo B. РАСПОЗНАВАНИЕ ЗАРАЖЕННЫХ ХРИЗАЛИДОВ ТУТОВОГО ШЕЛКОПРЯДА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СПЕКТРОСКОПИИ БЛИЖНЕГО ИК-ДИАПАЗОНА В СОЧЕТАНИИ С МНОГОМЕРНЫМ АНАЛИЗОМ ВО ВРЕМЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ Cordyceps militaris. Журнал прикладной спектроскопии. 2021;88(1):169(1)-169(8).

For citation:


Zhang Y., Wang X., Wang C., Zhou Y., Pan D., Luo B. DISCRIMINATION OF INFECTED SILKWORM CHRYSALISES USING NEAR INFRARED SPECTROSCOPY COMBINED WITH MULTIVARIATE ANALYSIS DURING THE CULTIVATION OF Cordyceps militaris. Zhurnal Prikladnoii Spektroskopii. 2021;88(1):169(1)-169(8).

Просмотров: 72


ISSN 0514-7506 (Print)