РАСПОЗНАВАНИЕ ЗАРАЖЕННЫХ ХРИЗАЛИДОВ ТУТОВОГО ШЕЛКОПРЯДА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СПЕКТРОСКОПИИ БЛИЖНЕГО ИК-ДИАПАЗОНА В СОЧЕТАНИИ С МНОГОМЕРНЫМ АНАЛИЗОМ ВО ВРЕМЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ Cordyceps militaris

Ближняя ИК-спектроскопия использована для распознавания зараженных хризалидов тутового шелкопряда. Всего 105 хризалидов тутового шелкопряда (65 инфицированных и 40 незараженных) собрано в пекинской компании Shoucheng Agricultural Development Co., Ltd. Спектры в ближнем ИК-диапазоне получены из областей головы, груди, живота и задней части брюшка каждого хризалида тутового шелкопряда (как незараженных, так и инфицированных). Для идентификации незараженных и инфицированных хризалидов тутового шелкопряда использованы три метода предварительной обработки спектров и четыре модели распознавания. Результаты показывают, что модель, использующая дискриминантный анализ на основе частичных наименьших квадратов и спектры, обработанные методом мультипликативной коррекции рассеяния, имеет лучшие характеристики распознавания (точность прогнозирования калибровочного набора и набора прогнозирования 100 и 97.5%). Область головы оказалась наилучшим участком для распознавания незараженных и инфицированных хризалидов тутового шелкопряда. Неинфицированные и зараженные хризалиды шелкопряда могут быть успешно идентифицированы с помощью методов ближней ИК-спектроскопии при культивировании Cordyceps militaris.

1. G. H. Sung, N. L. Hywel-Jones, J. M. Sung, J. J. Luangsaard, B. Shrestha, J. W. Spatafora, Stud. Mycol., 57, 50–59 (2007).

2. S. X. Bi, Y. S. Jing, Q. Q. Zhou, Food Funct., 9, No. 1, 279–293 (2018).

3. K. Nakamura, K. Shinozuka, N. Yoshikawaa, J. Pharmacol. Sci., 127, No. 1, 53–56 (2015).

4. Z. Y. Zhu, F. Liu, H. Gao, H. Sun, M. Meng, Y. M. Zhang, Int. J. Biol. Macromol. A, 93, 1090–1099 (2016).

5. X. W. Tian, Q. P. Song, M. He, Y. L. Lu, Y. C. Liu, L. S. Feng, Biosci. Biotech. Res. Commun., 9, No. 4, 596–602 (2016).

6. H. T. Fan, H. S. Lin, Chin. J. Chin. Mater. Med., 38, 2549–2552 (2013).

7. H. O. Kim, J. W. Yun, J. Appl. Microbiol., 99, 728–738 (2005).

8. Z. L. Zheng, C. H. Huang, C. Y. Mei, R. C. Han, J. Environ. Entomol., 33, 225–233 (2011).

9. R. R. M. Paterson, Phytochemistry, 69, 1469–1495 (2008).

10. Y. F. Han, Microbiol. China, 32, 1423–1428 (2009).

11. X. L. Chu, W. Z. Lu, Spectrosc. Spectr. Anal., 34, 2595–2605 (2014).

12. H. Z. Chen, L. L. Xu, G. Q. Tang, Q. Q. Song, Q. X. Feng, Food Anal. Methods, 9, 1–10 (2015).

13. Y. He, X. L. Li, J. Infrared Millim. Waves, 25, 192–194 (2006).

14. H. E. Tahir, X. B. Zou, T. T. Shen, J. Y. Shi, A. A. Mariod, Food Anal. Methods, 9, 2631–2641 (2016).

15. S. M. Pan, M. Tao, A. Q. Sun, T. M. Jin, Acta Entomol. Sin., 39, 360–365 (1996).

16. F. Dai, L.Wu, G. Ye, Y. Zhong, T. Hong, X. Huang, Trans. Chin. Soc. Agric. Mach., 46, No. 12, 280–284 (2015).

17. J. Engel, J. Gerretzen, E. Szymańska, J. Jansen, G. Downey, L. Blanchet, L. Buydens, TrAC Trends Anal. Chem., 50, 96–106 (2013).

18. R. Vašát, R. Kodešová, A. Klement, L. Borůvka, Geoderma, 298, 46–53 (2017).

19. Y. Zhao, J. Zhang, H. Jin, J. Zhang, T. Shen, Y. Wang, J. AOAC Int., 98, 22–26 (2015).

20. B. T. Borille, M. C. Marcelo, R. S. Ortiz, K. C. Mariotti, M. F. Ferrão, R. P. Limberger, Spectrochim. Acta A, 173, 318–323 (2016).

21. E. Teye, X. Huang, H. Dai, Q. Chen, Spectrochim. Acta A, 114, 183–189 (2013).

22. L. L. Tao, W. Huang, X. J. Yang, Z. Y. Cao, J. M. Deng, S. S. Wang, F. Y. Mei, M. W. Zhang, X. Zhang, Spectrosc. Spectr. Anal., 36, 2766–2773 (2016).

23. T. Koumbi-Mounanga, K. Groves, B. Leblon, G. Zhou, P. A. Cooper, Eur. J. Wood Prod., 73, 43–50 (2015).

24. F. Mabood, F. Jabeen, M. Ahmed, J. Hussain, S. A. A. Al Mashaykhi, Z. M. A. Al Rubaiey, S. Farooq, R. Boqué, L. Ali, Z. Hussain, A. Al-Harrasi, A. L. Khan, Z. Naureen, M. Idrees, S. Manzoor, Food Chem., 221, 746–750 (2017).