ФОТОФИЗИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ИНДОТРИКАРБОЦИАНИНОВЫХ КРАСИТЕЛЕЙ ПРИ КОМПЛЕКСООБРАЗОВАНИИ С СЫВОРОТОЧНЫМ АЛЬБУМИНОМ
https://doi.org/10.47612/0514-7506-2022-89-5-605-613
Аннотация
Исследованы фотофизические свойства индотрикарбоцианиновых красителей при комплексообразовании с сывороточным альбумином и оптимизирована методика обнаружения их образования с помощью электрофореза. В связи с деградацией молекул красителя под действием кислот поиск области локализации исследуемого красителя на поверхности гелевой пластины осуществлен путем регистрации спектров флуоресценции красителя до фиксации и визуализации белков с последующим завершением протокола получения электрофореграмм. Для минимизации возможного влияния свечения компонентов геля возбуждение осуществлялось излучением полупроводникового лазера с длиной волны 684 нм, возбуждающим флуоресценцию исследуемых красителей. Установлено, что положение максимумов и полуширины спектров флуоресценции красителей с ортофениленовым мостиком в цепи сопряжения в соответствующих локализации альбумина областях электрофореграммы совпадают с характеристиками испускания красителей в исходных растворах с альбумином, что позволяет выявить образование ковалентно связанных комплексов молекул красителей с альбумином.
Ключевые слова
Об авторах
Д. С. ТарасовБеларусь
Минск
М. П. Самцов
Беларусь
Минск
И. И. Хлудеев
Беларусь
Минск
Е. В. Малюшкова
Беларусь
Минск
И. В. Семак
Беларусь
Минск
Список литературы
1. D. M. Dereje, C. Pontremoli, M. J. Moran Plata, S. Visentin, N. Barbero. Photochem. Photobiol. Sci., 21 (2022) 397—419, https://doi.org/10.1007/s43630-022-00175-6
2. N. Lange, W. Szlasa, J. Saczko, A. Chwiłkowska. Pharmaceutics, 13, N 6 (2021) 818, https://doi.org/10.3390/pharmaceutics13060818
3. A. A. Ishchenko. Russ. Chem. Rev., 60, N 8 (1991) 865—884, https://doi.org/10.1070/RC1991v060n08ABEH001116
4. L. Beverina, P. Salice. Eur. J. Org. Chem., N 7 (2010) 1207—1225, https://doi.org/10.1002/ejoc.200901297
5. L. Beverina, M. Sassi. Synlett, 25, N 4 (2014) 477—490, https://doi.org/10.1055/s-0033-1340482
6. L. Stackova, E. Muchova, M. Russo, P. Slavicek, P. Stacko, P. Klan. J. Org. Chem., 85, N 15 (2020) 9776—9790, https://doi.org/10.1021/acs.joc.0c01104
7. М. П. Самцов, Е. С. Воропай, Л. С. Ляшенко, Д. Г. Мельников, К. Н. Каплевский, А. П. Луговский. Журн. прикл. спектр., 78, № 1 (2011) 121—127, https://doi.org/10.1007/s10812-011-9432-y
8. E. S. Voropay, M. P. Samtsov, A. P. Lugovsky, E. A. Zhavrid, E. N. Alexandrova, Yu. P. Istomun, I. N. Zhuravkin. Exp. Oncol., 19 (1997) 56―60
9. Y. P. Istomin, E. N. Alexandrova, E. A. Zhavrid, E. S. Voropay, M. P. Samtsov, K. N. Kaplevsky, A. P. Lugovsky, A.A. Lugovsky. Exp. Oncol., 28, N 1 (2006) 80—82, https://exponcology.com.ua/article/655/the-effect-of-hypoxia-on-photocytotoxicity-of-tics-tricarbocyanine-dye-in-vitro
10. A. А. Lugovski, M. P. Samtsov, K. N. Kaplevsky, D. S. Tarasau, E. S. Voropay, P. T. Petrov, Y. P. Istomin. J. Photochem. Photobiol. A: Chem., 316 (2016) 31—36, https://doi.org/10.1016/j.jphotochem.2015.10.008
11. J. Atchison, S. Kamila, H. Nesbitt, K. A. Logan, D. M. Nicholas, C. Fowley, J. Davis, B. Callan, A. P. McHale, J. F. Callan. Chem. Commun., 53, N 12 (2017) 2009—2012, https://doi.org/10.1039/C6CC09624G
12. М. П. Самцов, Е. С. Воропай, К. Н. Каплевский, Д. Г. Мельников, Л. С. Ляшенко, Ю. П. Истомин. Журн. прикл. спектр., 76, № 4 (2009) 576—582, https://doi.org/10.1007/s10812-009-9223-x
13. М. П. Самцов, Е. С. Воропай, Д. Г. Мельников, Л. С. Ляшенко, А. А. Луговский, Ю. П. Истомин. Журн. прикл. спектр., 77, № 3 (2010) 438—444, https://doi.org/10.1007/s10812-010-9346-0
14. Н. В. Белько, М. П. Самцов, Д. С. Тарасов. Журн. Бел. гос. ун-та. Физика, № 3 (2020) 17—23, https://doi.org/10.33581/2520-2243-2020-3-17-23
15. М. П. Самцов, Д. С. Тарасов, А. П. Луговский, П. Т. Петров, А. О. Савин, Р. Д. Зильберман, Е. С. Воропай. Докл. БГУИР, 18, № 8 (2020) 5—13; https://doi.org/10.35596/1729-7648-2020-18-8-5-13
16. U. Chilakamarthi, L. Giribabu. Chem. Rec., 17, N 8 (2017) 775—802, https://doi.org/10.1002/tcr.201600121
17. N. V. Kudinova, T. T. Berezov. Biochem. (Moscow) Suppl. Ser. B: Biomed. Chem., 4, N 1 (2010) 95—103, https://doi.org/10.1134/S1990750810010129
18. A. Loureiro, N. G. Azoia, A. C. Gomes, A. Cavaco-Paulo. Current Pharm. Design, 22, N 10 (2016) 1371—1390, https://doi.org/10.2174/1381612822666160125114900
19. H. Jeong, M. Huh, S. J. Lee, H. Koo, I. C. Kwon, S. Y. Jeong, K. Kim. Theranostics, 1 (2011) 230—239, https://doi.org/10.7150%2Fthno%2Fv01p0230
20. B. Bhushan, V. Khanadeev, B. Khlebtsov, N. Khlebtsov, P. Gopinath. Adv. Coll. Interface Sci., 246 (2017) 13—39, https://doi.org/10.1016/j.cis.2017.06.012
21. C. Zhu, Y. Xia. Chem. Soc. Rev., 46, N 24 (2017) 7668—7682, https://doi.org/10.1039/C7CS00492C
22. Н. В. Белько, И. И. Хлудеев, В. П. Зорин, М. П. Самцов. Весцi БДПУ. Сер. 3. Фізіка. Матэматыка. Інфарматыка. Біялогія. Геаграфія, 1 (2018) 14—20, https://elibrary.ru/item.asp?id=37154997
23. H. Chen, A. Ji, S. Qiu, Y. Liu, Q. Zhu, L. Yin. Food Hydrocoll., 76 (2018) 173—183, https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2016.12.004
24. M. Kasran, S. W. Cui, H. D. Goff. Food Hydrocoll., 30, N 2 (2013) 552—558, https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2012.08.004
25. M. Li, H. Li, P. De, B. S. Sumerlin. Macromol. Rap. Commun., 32, N 4 (2011) 354—359, https://doi.org/10.1002/marc.201000619
26. S. M. Usama, C. M. Lin, K. Burgess. Bioconjugate Chem., 29, N 11 (2018) 3886—3895, https://doi.org/10.1021/acs.bioconjchem.8b00708
27. K. Manokruang, J. S. Lym, D. S. Lee. Mater. Lett., 124 (2014) 105—109, https://doi.org/10.1016/j.matlet.2014.03.052
28. K. Wilson, J. Walker. Principles and Techniques of Biochemistry and Molecular Biology, Cambridge University Press (2018) 219—252
29. W. F. Patton. Electrophoresis: An Int. J., 21, N 6 (2000) 1123—1144, https://doi.org/10.1002/(SICI)1522-2683(20000401)21:6%3C1123::AID-ELPS1123%3E3.0.CO;2-E
30. L. Gao, R. T. Smith. J. Biophoton., 8, N 6 (2015) 441—456, https://doi.org/10.1002/jbio.201400051
31. М. П. Самцов, А. Е. Радько, К. Н. Каплевский, К. А. Шевченко. Квантовая электроника: материалы V междунар. науч.-техн. конф., Минск, 22—25 ноября 2004 г., Минск, БГУ (2004) 20—24
32. U. K. Laemmli. Nature, 227, N 5259 (1970) 680—685
33. B. D. Hames. Gel Electrophoresis of Proteins: Practical Approach, OUP Oxford (1998) 1—352
34. S. F. S. Groth, R. G. Webster, A. Datyner. Biochim. Biophys. Acta, 71 (1963) 377—391, https://doi.org/10.1016/0006-3002(63)91092-8
35. S. Luo, N. B. Wehr, R. L. Levine. Anal. Biochem., 350, N 2 (2006) 233—238, https://doi.org/10.1016/j.ab.2005.10.048
36. Н. В. Белько, М. П. Самцов, А. П. Луговский. Журн. Бел. гос. ун-та. Физика, 2 (2020) 19—27, https://doi.org/10.33581/2520-2243-2020-2-19-27
37. Д. С. Тарасов, К. Н. Каплевский, М. П.Самцов, Е. С. Воропай. Вестн. БГУ, Сер. 1, № 2 (2015) 8—12
Рецензия
Для цитирования:
Тарасов Д.С., Самцов М.П., Хлудеев И.И., Малюшкова Е.В., Семак И.В. ФОТОФИЗИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ИНДОТРИКАРБОЦИАНИНОВЫХ КРАСИТЕЛЕЙ ПРИ КОМПЛЕКСООБРАЗОВАНИИ С СЫВОРОТОЧНЫМ АЛЬБУМИНОМ. Журнал прикладной спектроскопии. 2022;89(5):605-613. https://doi.org/10.47612/0514-7506-2022-89-5-605-613
For citation:
Tarasov D.S., Samtsov M.P., Khludeyev I.I., Maliushkova E.V., Semak I.V. PHOTOPHYSICAL PROPERTIES OF INDOTRICARBOCYANINE DYES DURING COMPLEXATION WITH SERUM ALBUMIN. Zhurnal Prikladnoii Spektroskopii. 2022;89(5):605-613. (In Russ.) https://doi.org/10.47612/0514-7506-2022-89-5-605-613