Laser-Induced Breakdown and X-Ray Fluorescence Spectroscopies for the Elemental Analysis of Aquatic Organisms
Abstract
Elemental chemical analysis of aquatic organisms is necessary for biochemical and ecological studies, as well as for pollution monitoring. To this end, mainly wet analytical methods are used. However, direct analysis is possible by techniques such as X-ray fluorescence spectroscopy (XRF) and laser-induced breakdown spectroscopy (LIBS), which are mutually complementary in terms of analytical capabilities. Our study deals with the comparison of LIBS and XRF performance in the calibration-based determination of macroand microelements (P, Cl, K, Ca; B, Mn, Fe, Cu, Zn, and Sr) in organs and tissues of fishes and aquatic plants (bream, pike, horsetail, and hornwort). It has turned out necessary to normalise the signals of elements to the intensity of incoherently scattered radiation (in XRF) and to that of Balmer H-alpha emission line (in LIBS) to account for matrix effects. The comparison of the obtained data with the results of reference analysis by inductively coupled plasma optical emission spectroscopy has shown that LIBS is superior to XRF in terms of trueness for relatively light elements (P, K, Ca, Mn, Fe, and Cu). For heavier elements (Zn and Sr), this advantage moves to XRF. The combination of LIBS and XRF makes it possible to broaden the range of measurable elements, and in some cases (determination of P, K, Mn, Fe, Zn, and Sr), wet chemical decomposition becomes unnecessary, which is important for the simplification of analytical procedures.
About the Authors
N. I. SushkovRussian Federation
Department of Chemistry
Moscow
N. N. Kurian
Belarus
Grodno
S. N. Anuchin
Belarus
Grodno
S. M. Zaytsev
Russian Federation
Department of Chemistry
Moscow
References
1. C. M. Wood. Fish Physiology, Eds. C. M. Wood, A. P. Farrell, C. Brauner, 31, Academic Press (2011) 1—51
2. Т. И. Моисеенко. Геохимия, № 3 (2015) 222—233
3. И. В. Кизеветтер. Биохимия сырья водного происхождения, Москва, Пищевая промышленность (1973)
4. N. I. Sushkov, N. V. Lobus, I. V. Seliverstova, T. A. Labutin. Opt. and Spectrosс., 128, N 9 (2020) 1343—1349.
5. N. I. Sushkov, G. Galbács, K. Fintor, N. V. Lobus, T. A. Labutin. Analyst, 147 (2022) 3248—3257
6. N. I. Sushkov, G. Galbács, P. Janovszky, N. V. Lobus, T. A. Labutin. Sensors, 22 (2022) 8234
7. J. Ylikörkkö, G. N. Christensen, H. J. Andersen, D. Denisov, P.-A. Amundsen, P. Terentjev, E. Jelkänen. Environmental Monitoring Programme for Aquatic Ecosystems in the Norwegian, Finnish and Russian Border Area. Updated Implementation Guidelines, Centre for Economic Development, Transport and the Environment for Lapland (2015)
8. N. A. Panichev, S. E. Panicheva. Food Chemistry, 166 (2015) 432—441
9. R. R. Rasmussen, R. V. Hedegaard, E. H. Larsen, J. J. Sloth. Analyt. Bioanalyt. Chem., 403, N 10 (2012) 2825—2834
10. T. I. Moiseenko, L. P. Kudryavtseva. Environ. Poll., 114, N 2 (2001) 285—297
11. N. A. Gashkina, T. I. Moiseenko, L. A. Shuman, I. M. Koroleva. Ecotoxic. Environ. Safety, 239 (2022) 113659
12. M. O. Varrà, S. Ghidini, L. Husáková, A. Ianieri, E. Zanardi. Foods, 10, N 2 (2021) 270
13. O. Y. Song, M. A. Islam, J. H. Son, J. Y. Jeong, H. E. Kim, L. S. Yeon, N. Khan, N. Jamila, K. S. Kim. Meat Sci., 172 (2021) 108344
14. T. I. Moiseenko, N. A. Gashkina, Y. N. Sharova, L. P. Kudryavtseva. Ecotoxic. Environ. Safety, 71, N 3 (2008) 837—850
15. M. B. Bueno Guerra, C. E. G. R. Schaefer, G. G. A. de Carvalho, P. F. de Souza, D. S. Júnior, L. C. Nunes, F. J. Krug. J. Analyt. At. Spectrom., 28, N 7 (2013) 1096—1101
16. П. М. Фарков, А. Л. Финкельштейн. Аналитика и контроль, 6, № 4 (2002) 485—489
17. A. Hokura, E. Harada. Metallomics: Recent Analytical Techniques and Applications, Eds. Y. Ogra, T. Hirata, Tokyo, Springer Japan (2017) 125—145
18. Г. А. Леонова, В. А. Бобров. Геохимическая роль планктона континентальных водоемов Сибири в концентрировании и биоседиментации микроэлементов, Новосибирск, Гео (2012)
19. R. A. Rezk, A. H. Galmed, M. Abdelkreem, N. A. Abdel Ghany, M. A. Harith. J. Adv. Res., 14 (2018) 1—9
20. Y. Zhang, T. Zhang, H. Li. Spectrochim. Acta B: At. Spectrosc., 181 (2021) 106218
21. K. Rawat, N. Sharma, V. K. Singh. X‐Ray Fluorescence in Biological Sciences, Wiley оnline Books (2022) 1—20
22. F. M. Peinado, S. M. Ruano, M. G. B. González, C. E. Molina. Geoderma, 159, N 1 (2010) 76—82
23. G. G. Arantes de Carvalho, M. B. Bueno Guerra, A. Adame, C. S. Nomura, P. V. Oliveira, H. W. Pereira de Carvalho, D. Santos, L. C. Nunes, F. J. Krug. J. Analyt. At. Spectrom., 33, N 6 (2018) 919—944
24. D. Santos, L. C. Nunes, G. G. A. de Carvalho, M. da S. Gomes, P. F. de Souza, F. de O. Leme, L. G. C. dos Santos, F. J. Krug. Spectrochim. Acta B: At. Spectrosc., 71-72 (2012) 3—13
25. R. Zeisler. Fresenius’ J. Analyt. Chem., 360, N 3 (1998) 376—379
26. G. Galbács. Laser-Induced Breakdown Spectroscopy in Biological, Forensic and Materials Sciences, Cham, Springer International Publishing (2022)
27. N. B. Zorov, A. A. Gorbatenko, T. A. Labutin, A. M. Popov. Spectrochim. Acta B: At. Spectrosc., 65, N 8 (2010) 642—657
28. L. C. Peruchi, L. C. Nunes, G. G. A. de Carvalho, M. B. B. Guerra, E. de Almeida, I. A. Rufini, D. Santos, F. J. Krug. Spectrochim. Acta B: At. Spectrosc., 100 (2014) 129—136
29. A. M. Popov, T. F. Akhmetzhanov, S. M. Zaytsev, A. N. Drozdova, I. A. Kalko, T. A. Labutin. J. Analyt. At. Spectrom., 37, N 10 (2022) 2144—2154
30. F. O. Leme, D. M. Silvestre, A. N. Nascimento, C. S. Nomura. J. Analyt. At. Spectrom., 33, N 8 (2018) 1322—1329
31. Определение массовой доли химических элементов в пробах животного и растительного происхождения рентгенофлуоресцентным методом на приборе СЕР-01: МВИ.МН 3272-2009, Минск, МГЭУ (2009)
32. Описание типа средств измерений № 44726-10: спектрометры энергий рентгеновского излучения СЕР-01, ВНИИФТРИ (2010), https://fgis.gost.ru/fundmetrology/registry/4/items/355615
33. C. Aragon, J. A. Aguilera, F. Penalba. Appl. Spectrosc., 53, N 10 (1999) 1259—1267
34. Е. В. Смирнова, О. В. Зарубина. Стандартные образцы, № 3 (2014) 45—57
35. Количественный химический анализ почв. Методика измерений массовых долей металлов в осадках сточных вод, донных отложениях, образцах растительного происхождения спектральными методами. ПНД Ф 16.2.2:2.3.71-2011, Москва, ФБУ “ФЦАО” (2011)
36. Д. Кремерс, Л. Радзиемски. Лазерно-искровая эмиссионная спектроскопия, Москва, Техносфера (2009)
37. K. Rawat, N. Sharma, V. K. Singh. X‐Ray Fluorescence in Biological Sciences, Wiley Online Books (2022) 1—20
38. R. van Grieken, A. Markowicz. Handbook of X-ray Spectrometry, New York and Basel, Marcel Dekker (2002)
39. Г. В. Павлинский. Основы физики рентгеновского излучения, Москва, Физматлит (2007)
40. А. В. Подкорытова, Т. И. Вишневская. Парафармацевтика. Фармацевтический бюл., № 2 (2003) 22—23
41. Е. В. Лысенко. Комплексная оценка химического состава экосистем малых озёр восточного Сихотэ-Алиня, дис. … канд. геогр. наук, Владивосток, ТИГ ДВО РАН (2018)
42. A. J. Muztar, S. J. Slinger, J. H. Burton. Canad. J. Plant Sci., 58, N 3 (1978) 851—862
43. А. П. Виноградов. Полное собрание трудов в 18 т. Т.1. Химический элементарный состав организмов моря, Москва, РАН (2020)
44. E. Tognoni, G. Cristoforetti, S. Legnaioli, V. Palleschi. Spectrochim. Acta B: At. Spectrosc., 65, N 1 (2010) 1—14
45. Z. Hu, D. Zhang, W. Wang, F. Chen, Y. Xu, J. Nie, Y. Chu, L. Guo. TrAC, Trends Anal. Chem., 152 (2022) 116618
46. J. A. Aguilera, C. Aragón, G. Cristoforetti, E. Tognoni. Spectrochim. Acta B: At. Spectrosc., 64, N 7 (2009) 685—689
Review
For citations:
Sushkov N.I., Kurian N.N., Anuchin S.N., Zaytsev S.M. Laser-Induced Breakdown and X-Ray Fluorescence Spectroscopies for the Elemental Analysis of Aquatic Organisms. Zhurnal Prikladnoii Spektroskopii. 2023;90(6):917-925. (In Russ.)