![Доступ открыт](https://zhps.ejournal.by/lib/pkp/templates/images/icons/opened.png)
![Доступ закрыт](https://zhps.ejournal.by/lib/pkp/templates/images/icons/closed.png)
Оценка редокс-состояния Р700 растений томата при сопряженном воздействии повышенной температуры и поражении Fusarium oxysporum методом дифференциальной абсорбционной фотометрии с использованием технологии насыщающих импульсов света
Аннотация
С использованием метода дифференциальной абсорбционной фотометрии и технологии последовательных насыщающих импульсов света модулированной частоты исследованы кинетики окисления/восстановления Р700 в листьях верхнего яруса растений томатов при воздействии повышенной температуры (40 °С, 3 ч) и заражении Fusarium oxysporum и их сопряженном действии. Тепловое воздействие снижало уровень окисленности Р700, квантовый выход фотохимических реакций фотосистемы I (ФСI) и повышало нефотохимическую диссипацию энергии на акцепторной стороне ФСI. При этом в подвергшихся тепловой обработке растениях уменьшался вклад потока электронов, катализируемого ферредоксин-пластохинон редуктазой (FQR), и увеличивалась доля циклического переноса электронов, зависимого от НАДН-дегидрогеназа-подобного комплекса (NDH). При заражении растений патогенным грибом Fusarium oxysporum уменьшался квантовый выход фотохимических реакций ФСI и существенно повышалась нефотохимическая диссипация энергии на акцепторной стороне ФСI. Сопряженное воздействие повышенной температуры и Fusarium oxysporum усиливало подавляющий эффект обоих стрессовых факторов на фотоиндуцированное окисление Р700, активизировало нефотохимическую диссипацию энергии как на акцепторной, так и на донорной стороне ФСI. Индуцированное фузариозным увяданием и повышенной температурой подавление линейного и FQR-зависимого циклического потоков электронов компенсировалось активацией NDH-зависимого переноса электронов.
Список литературы
1. K. A. Garrett, S. P. Dendy, E. E. Frank, M. N. Rouse, S. E. Travers. Annu. Rev. Phytopathol., 44 (2006) 489-509
2. P. Pandey, V. Irulappan, M. V. Bagavathiannan, M. Senthil-Kumar. Front. Plant Sci., 8 (2017) 537
3. S. I. Zandalinas, R. Mittler. New Phytol., 234 (2022) 1161-1167
4. R. Mittler. Trends Plant. Sci., 11 (2006) 15-19
5. P. V. V. Prasad, S. R. Pisipati, I. Momcilovic, Z. Ristic. J. Agron. Crop Sci., 197 (2011) 430-441
6. N. Suzuki, R. M. Rivero, V. Shulaev, E. Blumwald, R. Mittler. New Phytol., 203 (2014) 32-43
7. N. J. Atkinson, C. J. Lilley, P. E. Urwin. Plant Physiol., 162 (2013) 2028-2041
8. C. M. Prasch, U. Sonnewald. Plant Physiol., 162 (2013) 1849-1866
9. P. Pandey, V. Ramegowda, M. Senthil-Kumar. Front. Plant Sci., 6 (2015) 723
10. V. S. Ramu, A. Paramanantham, V. Ramegowda, B. Mohan-Raju, M. Udayakumar, M. SenthilKumar. PLoS One, 11 (2016) 0157522
11. M. H. Walter. Planta, 177 (1989) 1-8
12. H. Sandermann Jr. Trends Plant Sci., 9, N 8 (2004) 406-413
13. L. Rizhsky, H. Liang, J. Shuman, V. Shulaev, S. Davletova, R. Mittler. Plant Physiol. 134, N 4 (2004) 1683-1696
14. S. M. Coakley, H. Scherm, S. Chakraborty. Annu. Rev. Phytopathol., 37 (1999) 399-426
15. H. Scherm, S. M. Coakley. Australas. Plant Pathol., 32 (2003) 157-165
16. A. McDonald, S. Riha, A. Di Tommasob, A. De Gaetanoa. Agric. Ecosyst. Environ., 130 (2009) 131-140
17. L. H. Ziska, M. B. Tomecek, D. R. Gealy. Agron. J., 102 (2010) 118-123
18. K. Peters, L. Breitsameter, B. Gerowitt. Agric. Sustain. Dev., 34 (2014) 707-721
19. B. G. Drake, K. Raschke, F. B. Salisbury. Plant Physiol., 46 (1970) 324-330
20. S. Sawada, S. Miyachi. Plant Cell Physiol., 15 (1974) 1-20
21. J. A. Berry, O. Björkman. Annu. Rev. Plant Physiol., 31 (1980) 491-543
22. S. J. Crafts-Brandner, M. E. Salvucci. Plant Physiol., 129 (2002) 1773-1780
23. E. Weis. Planta, 151, N 1 (1981) 33-39
24. U. Feller, S. J. Crafts-Brandner, M. E. Salvucci. Plant Physiol., 116, N 2 (1998) 539-546
25. M. Havaux. Plant Cell Environ., 16 (1993) 461-467
26. Y. Yamane, Y. Kashino, H. Koike, K. Satoh. Photosynth. Res., 57 (1998) 51-59
27. E. A. Lysenko, M. A. Kozuleva, A. A. Klaus, N. L. Pshybytko, V. V. Kusnetsov. Plant Physiol. Biochem., 194 (2023) 246-262
28. I. Enami, M. Kitamura, T. Tomo. Biochim. Biophys. Acta, 1186, N 1 (1994) 52-58
29. S. Z. Tóth, J. T. Puthur, V. Nagy, G. Garab. Plant Physiol., 149, N 3 (2009) 1568-1578
30. D. V. Yanykin, A. A. Khorobrykh, S. A. Khorobrykh, N. L. Pshybytko, V. V. Klimov. Photosynth. Res., 117, N 1–3 (2013) 367-374
31. P. Mohanty, B. Vani, J. S. S. Prakash. Z. Naturforsch, 57 (2002) 836-842
32. S. Nellaepalli, N.R. Mekala, O. Zsiros, P. Mohanty, R. Subramanyam. Biochim. Biophys. Acta: Bioenergetics, 1807, N 9 (2011) 1177-1184
33. N. R. Baker, E. Rosenqvist. J. Exp. Bot., 55 (2004) 1607-1621
34. S. Mathur, D. Agrawal, A. Jajoo. J. Photochem. Photobiol. B: Biol., 137 (2014) 116-126
35. A. K. Singh, G. S. Singhal. Photosynthetica, 36 (1999) 433-440
36. V. Dogra, C. Kim. Plant Signal. Behav., 14, N 11 (2019) 1656037
37. D. Nash, M. Miyao, N. Murata. Biochim. Biophys. Acta, 807 (1985) 127-133
38. N. Pshybytko, J. Kruk, L. Kabashnikova, K. Strzalka. Biochim. Biophys. Acta, 1777 (2008) 1393-1399
39. Y. Marutani, Y.Yamauchi, Y. Kimura. Planta, 236 (2012) 753-761
40. S. Katoh, A. San Pietro. Arch. Biochem. Biophys., 122 (1967) 144-152
41. N. Boucher, J. Harnois, R. Carpentier. Biochem. Cell Biol., 68 (1990) 999-1004
42. K. Yan, P. Chen, H. Shao, C. Shao, S. Zhao, M. Brestic. PLoS One, 8, N 5 (2013) e62100
43. R. Zhang, T. D. Sharkey. Photosynth. Res., 100 (2009) 29-43
44. M. Brestic, M. Zivcak, K. Kunderlikova, S. I. Allakhverdiev. Photosynth. Res., 130, N 1–3 (2016) 251-266
45. Y. Sun, C. Frankenberg, J. D. Wood, D. S. Schimel, M. Jung, L. Guanter, D. T. Drewry, M. Verma, A. Porcar-Castell, T. J. Griffis, L. Gu, T. S. Magney, P. Köhler, B. Evans, K. Yuen. Science, 358, N 6360 (2017) 5747
46. N. Pshybytko, J. Kruk, E. Lysenko, K. Strzalka, V. Demidchik. Env. Exp. Bot., 206 (2023) 105151
47. S. Wada, D. Takagi, C. Miyake, A. Makino, Y. Suzuki. Int. J. Mol. Sci., 20 (2019) 2068
48. M. R. S. Krishnamani, M. Lakshmanan. Can. J. Bot., 54, N 11 (2011) 1257-1263
49. G. Nogués, S. Kadener, P. Cramer, D. Bentley, A. R. Kornblihtt. J. Biol. Chem., 277 (2002) 43110-43114
50. C. Dong, L. Chen, J. Feng, J. Xu, S. Mahboob, K. Al-Ghanim, X. Li, P. Xu. PLoS One, 11 (2016) e0166160
51. Z. Katanić, S. Mlinarić, N. Katanić, J. Ćosić, V. Španić. Agronomy, 11 (2021) 2415
52. S. Chaturvedi, N. Beutler, G. Vasen, M. Pablo, X. Chen, G. Calia, L. Buie, R. Rodick, D. Smith, T. Rogers, L. S. Weinberger. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 119, N 39 (2022) e2204624119
53. F. A. Santos, V. S. Rao. Phytother. Res., 14, N 4 (2000) 240-244
54. S. Francesconi, G. M. Balestra. PLoS One, 15, N 6 (2020) e0235482
55. N. L. Pshibytko, L. A. Zenevich, L. F. Kabashnikova. Russ. J. Plant Physiol., 53, N 1 (2006) 25-31
56. C. Klughammer, U. Schreiber. PAM Appl. Notes, 1 (2008) 11-14
57. П. Ф. Рокицкий. Биологическая статистика, Минск, Вышэйшая школа (1973)
58. C. Klughammer, U. Schreiber. Photosynth. Res., 128 (2016) 195-214
59. N. R. Baker, J. Harbinson, D. M. Kramer. Plant Cell Env., 30 (2007) 1107-1125
60. P. Joliot, A. Joliot. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 102 (2005) 4913-4918
61. P. Joliot, A. Joliot. Biochim. Biophys. Acta, 1757 (2006) 362-368
62. S. Govindachary, C. Bigras, J. Harnois, D. Joly, R. Carpentier. Photosynth. Res., 94 (2007) 333-345
63. C. Miyake. Antioxidants (Basel), 9, N 3 (2020) 230
64. N. Bukhov, E. Egorova, R. Carpentier. Planta, 215 (2002) 812-820
65. N. G. Bukhov, C. Wiese, S. Neimanis, U. Heber. Photosynth. Res., 59 (1999) 81-93 [66] M. X. Jin, Z. T. Yao, H. Mi. Photosynthetica, 39, N 3 (2001) 419-425
66. K. Kadota, R. Furutani, A. Makino, Y. Suzuki, S. Wada, C. Miyake. Plants, 8, N 6 (2019) 152
67. T. Ogawa, K. Kobayashi, Y. Y. Taniguchi, T. Shikanai, N. Nakamura, A. Yokota, Y. N. Munekage. Plant Physiology, 191, N 4 (2023) 2288-2300
68. M. Ma, Y. Liu, C. Bai, Y. Yang, Z. Sun, X. Liu, S. Zhang, X. Han, J. W. H. Yong. Front. Plant Sci., 12 (2021) 702196
69. T. G. Laughlin, A. N. Bayne, J. F. Trempe. Nature, 566 (2019) 411-414
70. Y. Munekage, M. Hojo, J. Meurer, T. Endo, M. Tasaka, T. Shikanai. Cell, 110 (2002) 361-371
71. Y. Munekage, M. Hashimoto, C. Miyake, K. I. Tomizawa, T. Endo, M. Tasaka. Nature, 429 (2004) 579-582
72. Q. Li, Z. J. Yao, H. Mi. Front. Plant Sci., 7 (2016) 285
Рецензия
Для цитирования:
Пшибытко Н.Л. Оценка редокс-состояния Р700 растений томата при сопряженном воздействии повышенной температуры и поражении Fusarium oxysporum методом дифференциальной абсорбционной фотометрии с использованием технологии насыщающих импульсов света. Журнал прикладной спектроскопии. 2024;91(1):56-64.
For citation:
Pshybytko N.L. Assessment of P700 Redox State of Tomato Plants Under Conjugated Influence of Elevated Temperature and Fusarium Oxysporum Infection by the Method of Differential Absorption Photometry Using Technology of Saturating Light Pulse. Zhurnal Prikladnoii Spektroskopii. 2024;91(1):56-64. (In Russ.)