Спектрофотометрическое исследование гидрокортизона в УФ-видимой области
Аннотация
Разработан метод спектрофотометрической оценки в УФ-видимом диапазоне химической стабильности гидрокортизона в водной среде в зависимости от времени анализа, определены его константы кислотности с помощью надежной методологии с использованием программного обеспечения SQUAD. Определена константа кислотности pKa 11.45 ± 0.02 (298 К). Молярные коэффициенты поглощения связали с химическими равновесиями, при которых стало возможным предложить механизм депротонирования. Для разработанного аналитического метода пределы обнаружения и количественного определения гидрокортизона составили 386 ± 3 и 1280 ± 10 нМ, валидация показала возможность надежного количественного определения гидрокортизона в фармацевтических препаратах.
Об авторах
G. M. Ramos-ReyesМексика
S. Corona-Avendaño
Мексика
M.T. Ramírez-Silva
Мексика
M. Romero-Romo
Мексика
M. Palomar-Pardavé
Мексика
Список литературы
1. K. A. Connors, G. L. Amidon, V. J. Stella, Chemical Stability of Pharmaceuticals: A Handbook for Pharmacists, 2nd ed., John Wiley & Sons, Ney York (1986), https://doi.org/10.1016/S0003-0465(15)31395-1.
2. M. Jia, W. M. Chew, Y. Feinstein, P. Skeath, E. M. Sternberg, Analyst, 141, 2053–2060 (2016), https://doi.org/10.1039/c5an02387d.
3. A. Singh, A. Kaushik, R. Kumar, M. Nair, S. Bhansali, Appl. Biochem. Biotechnol., 174, 1115–1126 (2014), https://doi.org/10.1007/s12010-014-0894-2.
4. A. Kaushik, A. Vasudev, S. K. Arya, S. K. Pasha, S. Bhansali, Biosens. Bioelectron., 53, 499–512 (2014), https://doi.org/10.1016/j.bios.2013.09.060.
5. A. I. Lauerma, S. Reitamo, H. I. Maibach, J. Am. Acad. Dermatol., 24, 182–185 (1991), https://doi.org/10.1016/0190-9622(91)70024-V.
6. A. Machanda, M. Laracy, R. Bogner, Int. J. Pharm. Compd., 22, 66–75 (2018).
7. W. R. Lovallo, J. L. Robinson, D. C. Glahn, P. T. Fox, Psychoneuroendocrinology, 35, 15–20 (2010), https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2009.09.010.
8. S. Kuhlmann, C. Kirschbaum, O. T. Wolf, Neurobiol. Learn Mem., 83, 158–162 (2005), https://doi.org/10.1016/j.nlm.2004.09.001.
9. M. Vythilingam, E. Vermetten, G. M. Anderson, D. Luckenbaugh, E. R. Anderson, J. Snow, L. H. Staib, D. S. Charney, J. D. Bremner, Biol. Psychiatry, 56, 101–112 (2004), https://doi.org/10.1016/j.biopsych.2004.04.002.
10. J. Hansen, H. Bundgaalw, Int. J. Pharm., 6, 307 (1980), https://doi.org/10.1016/0378-5173(80)90114-3.
11. A. B. Sarkar, R. Dudley, S. Melethil, J. Speidel, G. M. Bhatt, Innov. Pharm., 2, 3–5 (2011), https://doi.org/10.24926/iip.v2i3.237.
12. J. P. Fawcett, D. W. Boulton, R. Jiang, D. J. Woods, Ann. Pharm., 29, 987–990 (1995), https://doi.org/10.1016/S0022-3476(71)80178-6.
13. T. Ghafourian, P. Zandasrar, H. Hamishekar, A. Nokhodchi, J. Controll. Rel., 99, 113–125 (2004), https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2004.06.010.
14. K. Sarafoglou, M. T. Gonzalez-Bolanos, C. L. Zimmerman, T. Boonstra, Y. Addo, R. Brundage, J. Clin. Pharm., 1–5 (2014), https://doi.org/10.1002/jcph.424.
15. L. V. Rao, J. R. Petersen, M. G. Bissell, A. O. Okorodudu, A. A. Mohammad, J. Chromatogr. B: Biomed. Sci. Appl., 730, 123–128 (1999), https://doi.org/10.1016/S0378-4347(99)00151-6.
16. E. Tu, P. Pearlmutter, M. Tiangco, G. Derose, L. Begdache, A. Koh, ACS Omega, 5, 8211–8218 (2020), https://doi.org/10.1021/acsomega.0c00498.
17. K. Balaji, G. V. R. Reddy, T. M. Reddy, S. J. Reddy, Afr. J. Pharm. Pharmacol., 2, 157–166 (2008), http://www.academicjournals.org/ajpp.
18. J. M. Lemus Gallego, J. Pérez Arroyo, Anal. Chim. Acta, 460, 85–97 (2002), https://doi.org/10.1016/S0003-2670(02)00138-1.
19. S. Dalirirad, A. J. Steckl, Sens. Actuators B Chem., 283, 79–86 (2019), https://doi.org/10.1016/j.snb.2018.11.161.
20. J. Smajdor, R. Piech, M. Rumin, B. Paczosa-Bator, Electrochim. Acta, 182, 67–72 (2015), https://doi.org/10.1016/j.electacta.2015.09.057.
21. R. N. Goyal, S. Chatterjee, A. R. S. Rana, Talanta, 83, 149–155 (2010), https://doi.org/10.1016/j.talanta.2010.08.054.
22. D. Jenkins, C. Diallo, E. Bethea, E. Kaale, T. Layloff, In: Calibration and Validation of Analytical Methods – A Sampling of Current Approaches, Ed. M. Stauffer, 1st ed., Intech Open, London, United Kingdom, 143–163 (2018), https://doi.org/10.5772/intechopen.71765.
23. S. M. Moosavi, S. Ghassabian, In: Calibration and Validation of Analytical Methods – A Sampling of Current Approaches, Ed. M. Stauffer, 1st ed., Intech Open, London, United Kingdom, 109–127 (2018), https://doi.org/10.5772/intechopen.72932.
24. M. Thompson, S. L. R. Ellison, R. Wood, Pure Appl. Chem., 74, 835–855 (2002), https://doi.org/10.1351/pac200274050835.
25. T. Nageswara Rao, In: Calibration and Validation of Analytical Methods – A Sampling of Current Approaches, Ed. M. Stauffer, 1st ed., Intech Open, London, United Kingdom, 131–142 (2018), https://doi.org/10.1021/ac00257a001.
26. D. Rawat, D. Kumar, Nature of Electronic Transitions and Factors Affecting it: Woodward Fieser Rules and Applications of UV Spectroscopy, Delhi (2014), http://epgp.inflibnet.ac.in/epgpdata/uploads/epgp_content/chemistry/12.organic_spectroscopy/02.nature_of_electronic_transitions_and_the_factors_affecting_it/et/5557_et_et.pdf.
27. K. Florey, In: Analytical Profiles of Drug Substances, Eds. A. Ciba Geigy, H. Y. Aboul Enein, A. A. Al-Badr, S. L. Ali, Elsevier Science Inc., 277–324 (1983).
28. V. das Gupta, J. Pharm. Sci., 67, 299–302 (1978), https://doi.org/10.1002/jps.2600670305.
29. ACD/pK, version 12.01 for Microsoft Windows, Advanced Chemistry Development, Inc. 8 King Street East, Suite 107, Toronto, Ontario M5C 1B5 Canada (2010), https://www.acdlabs.com/products/perceptaplatform/physchem-suite/pka/#product_demo (accessed November 6, 2022).
30. S. Babić, A. J. M. Horvat, D. Mutavdžić Pavlović, M. Kaštelan-Macan, TrAC – Trends in Analytical Chemistry, 26, 1043–1061 (2007), https://doi.org/10.1016/j.trac.2007.09.004.
31. R. A. Holt, P. G. Seybold, Molecules, 27 (2022), https://doi.org/10.3390/molecules27020385.
32. M. Lapins, S. Arvidsson, S. Lampa, A. Berg, W. Schaal, J. Alvarsson, O. Spjuth, J. Cheminform., 10 (2018), https://doi.org/10.1186/s13321-018-0271-1.
33. O. Toure, C.-G. Dussap, A. Lebert, Oil & Gas Science and Technology, 68, 281–297 (2013), https://doi.org/10.2516/ogst/2012094ï.
34. M. Palomar-Pardavé, G. Alarcón-Angeles, M. T. Ramírez-Silva, M. Romero-Romo, A. RojasHernández, S. Corona-Avendaño, J. Inclusion Phenom. Macrocycl. Chem., 69, 91 (2011), https://doi.org/10.1007/s10847-010-9818-0.
35. A. K. Rivas-Sánchez, D. S. Guzmán-Hernández, M. T. Ramírez-Silva, M. Romero-Romo, M. PalomarPardavé, Dyes and Pigments, 184, 108641 (2021), https://doi.org/10.1016/j.dyepig.2020.108641.
36. I. E. Widmer, J. J. Puder, C. König, H. Pargger, H. R. Zerkowski, J. Girard, B. Müller, J. Clin. Endocrinology and Metabolism, 90, 4579–4586 (2005), https://doi.org/10.1210/jc.2005-0354.
Рецензия
Для цитирования:
Ramos-Reyes G.M., Corona-Avendaño S., Ramírez-Silva M., Romero-Romo M., Palomar-Pardavé M. Спектрофотометрическое исследование гидрокортизона в УФ-видимой области. Журнал прикладной спектроскопии. 2024;91(1):168.
For citation:
Ramos-Reyes G.M., Corona-Avendaño S., Ramírez-Silva M., Romero-Romo M., Palomar-Pardavé M. Hydrocortisone UV-Vis Spectrophotometric Study: Stability, Determination of Its Acidity Constants and Quantification. Zhurnal Prikladnoii Spektroskopii. 2024;91(1):168.