Динамическое светорассеяние для контроля качества гидролизованного коллагена

Разработан способ качественного анализа гидролизованного коллагена (ГК) методом динамического светорассеяния, который может быть использован в производстве и контроле качества ГК. На основе ультрафильтрации в сочетании со спектрофотометрией предложен способ полуколичественного анализа пептидной фракции с молекулярной массой 10 кДа, которая определяет наиболее значимые свойства ГК. 

1. S. Ricard-Blum. Cold Spring Harb. Perspect Biol., 3, N 1 (2011) a004978

2. M. D. Shoulders, R. T. Raines. Annu. Rev. Biochem., 78 (2009) 929—958

3. T. F. Robinson, L. Cohen-Gould, S. M. Factor, M. Eghbali, O. O. Blumenfeld. Scanning Microsc., 2, N 2 (1988) 1005—1015

4. B. Brodsky, A. V. Persikov. Adv. Protein Chem., 70 (2005) 301—339

5. A. Leon-Lopez, A. Morales-Penaloza, V. M. Martinez-Juarez, A. Vargas-Torres, D. I. Zeugolis, G. Aguirre-Alvarez. Molecules, 24, N 22 (2019)

6. J. A. Werkmeister, J. A. Ramshaw. Clin. Mater, 9, N 3-4 (1992) 137—138

7. E. Rezvani Ghomi, N. Nourbakhsh, M. Akbari Kenari, M. Zare, S. Ramakrishna. J. Biomed. Mater. Res. B Appl. Biomater. (2021)

8. E. Proksch, M. Schunck, V. Zague, D. Segger, J. Degwert, S. Oesser. Skin. Pharmacol. Physiol., 27, N 3 (2014) 113—119

9. L. Bolke, G. Schlippe, J. Gerss,W. Voss. Nutrients, 11, N 10 (2019)

10. A. E. Bello, S. Oesser. Curr. Med. Res. Opin., 22, N 11 (2006) 2221—2232

11. D. Zdzieblik, S. Oesser, M. W. Baumstark, A. Gollhofer, D. Konig. Br. J. Nutr., 114, N 8 (2015) 1237—1245

12. F. Guillerminet, V. Fabien-Soule, P. C. Even, D. Tome, C. L. Benhamou, C. Roux, A. Blais. Osteoporos Int., 23, N 7 (2012) 1909—1919

13. N. Tomosugi, S. Yamamoto, M. Takeuchi, H. Yonekura, Y. Ishigaki, N. Numata, S. Katsuda, Y. Sakai. J. Atheroscler. Thromb., 24, N 5 (2017) 530—538

14. K. Skov, M. Oxfeldt, R. Thogersen, M. Hansen, H. C. Bertram. Nutrients, 11, N 5 (2019)

15. H. Hong, H. Fan, M. Chalamaiah, J. Wu. Food Chem., 301 (2019) 125222

16. A. Leon-Lopez, L. Fuentes-Jimenez, A. D. Hernandez-Fuentes, R. G. Campos-Montiel, G. Aguirre-Alvarez. Int. J. Mol. Sci., 20, N 16 (2019)

17. C. F. Chi, Z. H. Cao, B. Wang, F. Y. Hu, Z. R. Li, B. Zhang. Molecules, 19, N 8 (2014) 11211—11230

18. S. C. Sousa, S. P. Fragoso, C. R. A. Penna, N. M. O. Arcanjo, F. A. P. Silva, V. C. S. Ferreira, M. D. S. Barreto, Í. B. S. Araújo. LWT – Food Science and Technology, 76 (2017) 320—325

19. S. E. Bilek, S. K. Bayram. J. Funct. Foods, 14 (2015) 562—569

20. D. Konig, S. Oesser, S. Scharla, D. Zdzieblik, A. Gollhofer. Nutrients, 10, N 1 (2018)

21. R. J. Simpson. CSH Protoc, N 1 (2006)

22. H. Hong, B. C. Roy, M. Chalamaiah, H. L. Bruce, J. Wu. Food Chem., 258 (2018) 174—180

23. E. J. Zaluzec, D. A. Gage, J. T. Watson. Protein Exp. Purif, 6, N 2 (1995) 109—123

24. P. Lecchi, M. Olson, F. L. Brancia. J. Am. Soc. Mass Spectrom., 16, N 8 (2005) 1269—1274

25. S. Pataridis, A. Eckhardt, K. Mikulikova, P. Sedlakova, I. Miksik. J. Sep. Sci., 31, N 20 (2008) 3483—3488

26. G. Zhang, A. Sun, W. Li, T. Liu, Z. Su. J. Chromatogr. A, 1114, N 2 (2006) 274—277

27. V. S. Simons, G. Lochnit, J. Wilhelm, B. Ishaque, M. Rickert, J. Steinmeyer. Sci. Rep., 8, N 1 (2018) 17733

28. H. Ohara, H. Matsumoto, K. Ito, K. Iwai, K. Sato. J. Agric. Food Chem., 55, N 4 (2007) 1532—1535

29. B. Vatansever, B. Binici. J. Chem. Metrology, 1 (2015) 1—15

30. A. P. Minton. Anal. Biochem., 501 (2016) 4—22