ОБНАРУЖЕНИЕ ОСТАТКОВ РАКТОПАМИНА И КЛЕНБУТЕРОЛА ГИДРОХЛОРИДA В СВИНИНЕ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СПЕКТРОСКОПИИ ПОВЕРХНОСТНОГО ГИГАНТСКОГО КОМБИНАЦИОННОГО РАССЕЯНИЯ СВЕТА

Спектроскопия поверхностного гигантского комбинационного рассеяния (ГКР) в сочетании с хемометрическими методами, такими как метод адаптивных итеративно взвешенных наименьших квадратов (AIR-PLS), вейвлет-преобразование и метод наименьших квадратов опорных векторов (LSSVM), применена для быстрого обнаружения и идентификации следов рактопамина (RAC) и кленбутерола гидрохлорида (CL) в свинине. Интенсивности первых вейвлет-сигналов на 1168 см^-1 использованы для создания стандартной кривой остатков RАС в свинине (линейное уравнение регрессии у = -4.3683x - 11.059, коэффициент корреляции -0.9726), а интенсивности вторых сигналов на 1258 см^-1 - остатков CL (линейное уравнение регрессии у = 33.595x + 36,538, коэффициент корреляции 0.9842). Вторые вейвлет-сигналы спектров ГКР выбраны в качестве входов модели классификации LSSVM для идентификации остатков RАС и CL в свинине со степенью точности, достигающей 100%. Экспериментальные результаты показывают, что предложенный метод, основанный на ГКР, является хорошей схемой быстрого обнаружения и идентификации остатков RAC и CL в свинине.

рактопамин, кленбутерола гидрохлорид, спектроскопия гигантского комбинационного рассеяния света, свинина, быстрое обнаружение и идентификация, ractopamine, clenbuterol hydrochloride, surface enhanced Raman spectroscopy, pork, rapid detection and identification

1. D.Wang, S. M. Yang, X. W. Liu, H. X. Yu, J. Instrum. Analysis, 29, No. 8, 812-816 (2010).

2. F. L. Zhai, Y. Q. Huang, X. C. Wang. K. Q. Lai, Chin. J. Anal. Chem., 40, No. 5, 718-723 (2012).

3. I. Izquierdo-Lorenzo, S. Sanchez-Cortes, J. V. Garcia-Ramos, Langmuir, 26, No. 18, 14663-14670 (2010).

4. Q. C. Chu, C. H. Geng, H. Zhou, J. N. Ye, Chin. J. Chem., 25, No 12, 1832-1835 (2007).

5. S. H. Cheng, C. L. Yang, L. Zheng, L. Ding, Anal. Instrum., No. 4, 69-72 (2009).

6. J. P. Wang, S. X. Zhang, J. Z. Shen, J. Anim. Sci., 84, No. 5, 1248-1251 (2006).

7. L. M. He, Y. J. Su, Z. L. Zeng, X. H. Huang, Anim. Feed Sci. Technol., 132, No. 3-4, 316-323 (2007).

8. L. L. He, M. S. Lin, H. Li, N. J. Kim, J. Raman Spectrosc., 41, No. 10, 739-744 (2009).

9. W. S. Yu, Y. Q. Huang, L. Pei, Y. X. Fan, X. H. Wang, K. Q. Lai, J. Nanomater., No. 7, 1-8 (2014).

10. L. Wu, Z. J. Wang, B. Z. Shen, Nanoscale, 5, 5274-5278 (2013).

11. H. K. Ma, X. H. Han, C. H. Zhang, X. Zhang, X. F. Shi, J. Ma, Acta Laser Biol. Sin., 23, No. 6, 560-565 (2014).

12. J. H. Zhao, H. C. Yuan, M. H. Liu, J. Xu, H. B. Xiao, Q. Hong, J. Nucl. Agric. Sci., 27, No. 11, 1686-1691 (2013).

13. D. M. Zhu, H. P. Yang, X. S. Luo, Y. Liu, Z. H. Shen, J. Lu, X. W. Ni, Spectrosc. Spect. Anal., 27, No. 12, 2553-2557 (2007).

14. C. X. Fang, J. H. Li, Y. Z. Liang, J. Instrum. Anal., 31, No. 5, 541-545 (2012).

15. X. Li, Y. Lü, J. Beijing Inform. Sci. Technol. Univ., 28, No. 2, 27-30 (2013).