Гибридные структуры на основе полиэлектролитов и наночастиц серебра для чувствительного флуоресцентного твердофазного иммуноанализа

   Исследовано влияние модификации поверхности полистирольных планшетов для иммунохимического анализа наночастицами серебра и полиэлектролитами на рост флуоресцентного сигнала меченных флуоресцентными метками адсорбированных антител IgG-ФИТЦ, IgG-AF488 и IgG-AF647. Полученная твердая фаза характеризуется повышенной на 30—50 % сорбционной емкостью по сравнению с полистиролом класса high-binding (Greiner, Австрия) и способностью усиливать флуоресцентный сигнал меток за счет плазмонного эффекта, что в совокупности обеспечивает рост интенсивности флуоресценции в 3—15 раз в зависимости от состояния поверхности планшета, природы полиэлектролита, оптических и физико-химических свойств меченых антител.

1. R. Nooney, A. Clifford, X. LeGuevel, O. Stranik, C. McDonagh, B. D. MacCraith. Anal. Bioanal. Chem., 396, N 3 (2010) 1127—1134

2. О. С. Кулакович, С. В. Гапоненко, Д. В. Гузатов. Журн. прикл. спектр., 90, № 3 (2023) 447—455

3. S. V. Gaponenko. Introduction to Nanophotonics, Cambridge, Cambridge University Press (2010) 436—454

4. И. В. Коктыш, Я. И. Мельникова, О. С. Кулакович, А. А. Романенко, С. В. Ващенко, А. О. Муравицкая, С. В. Гапоненко, С. А. Маскевич. Журн. прикл. спектр., 87, № 5 (2020) 796—803

5. А. А. Романенко, С. В. Ващенко, В. В. Станкевич, А. Я. Луневич, Ю. Ф. Глухов, С. В. Гапоненко. Журн. прикл. спектр., 81, № 2 (2014) 228—232

6. O. Kulakovich, A. Scherbovich, I. Koktysh, Y. Melnikova, A. Ramanenka, S. Gaponenko, S. Maskevich. Z. Phys. Chem., 236, N 11-12 (2022) 1603—1615

7. О. С. Кулакович, А. А. Щербович, А. А. Романенко, И. В. Коктыш, Я. И. Мельникова, С. В. Гапоненко, С. А. Маскевич. Журн. прикл. спектр., 90, № 1 (2023) 48—55

8. S. Vaschenko, A. Ramanenka, O. Kulakovich, A. Muravitskaya, D. Guzatov, A. Lunevich, A. Ya. Lunevich, Y. F. Glukhov, S. Gaponenko. Proc. Eng., 140 (2016) 57—66

9. В. И. Степуро, О. С. Кулакович, А. А. Маскевич, Д. В. Гузатов, Х. В. Демир, С. В. Гапоненко, С. А. Маскевич. Опт. и спектр., 131, № 10 (2023) 1418—1430

10. P. C. Lee, D. Meisel. J. Phys. Chem., 86 (1982) 3391—3395

11. И. В. Коктыш, Т. С. Пицко, Я. И. Мельникова. Биотехнология: практикум, Минск, ИВЦ Минфина (2023) 127—128

12. M. Vincent, J. Gallay, A. P. Demchenko. J. Phys. Chem., 99, N 41 (1995) 14931—14941

13. A. Livesey, J. Brochon. Biophys. J., 52, N 5 (1987) 693—706

14. J.-C. Brochon. Methods Enzymol., 240 (1994) 262—311

15. A. Siemiarczuk, B. D. Wagner, W. R. Ware. J. Phys. Chem., 94, N 4 (1990) 1661—1666

16. P. J. Steinbach, R. Ionescu, C. R. Matthews. Biophys. J., 82, N 4 (2002) 2244—2255

17. R. Esposito, C. Altucci, R. Velotta. J. Fluoresc., 23, N 1 (2013) 203—211

18. А. А. Маскевич, В. И. Степуро, П. Т. Балинский. Журн. прикл. спектр., 77, № 2 (2010) 209—217

19. A. Muravitskaya, O. Kulakovich, P.-M. Adam, S. Gaponenko. Phys. Status Solidi (b), 255 (2018) 1700491

20. S. Gao, X. Lan, Y. Liu, Z. Shen, J. Lu, X. Ni. Chin. Opt. Lett., 2 (2004) 160—161

21. X. Xu, S. Angioletti-Uberti, Y. Lu, J. Dzubiella, M. Ballauff. Langmuir, 35, N 16 (2019) 5373—5391

22. K. Achazi, R. Haag, M. Ballauff, J. Dernedde, J. N. Kizhakkedathu, D. Maysinger, G. Multhaup. Angew. Chem. Int. Ed., 60, N 8 (2021) 3882—3904

23. S. Wang, K. Chen, Y. Xu, X. Yu, W. Wang, L. Li, X. Guo. Soft Matter, 9 (2013) 11276—11287

24. C. Gebhardt, M. Lehmann, M. M. Reif, M. Zacharias, G. Gemmecker, T. Cordes. Chem. Phys. Chem., 22, N 15 (2021) 1566—1583

25. M. Hoefling, N. Lima, D. Haenni, C. A. M. Seidel, B. Schuler, H. Grubmüller. PLoS One, 6, N 5 (2011) e19791