Спектрофотометрические и жидкостные хроматографические методы количественного определения антибактериального флуоресцентного красителя (флоксина Б) в образцах стоматологических таблеток и зубной пасты

Методы двухлучевой УФ-видимой спектрофотометрии и высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) использованы для определения антибактериального флуоресцентного красителя флоксина Б в стоматологических препаратах. В видимом диапазоне 400–800 нм спектрофотометрический сигнал получен при λ_max = 539 нм. В процессе ВЭЖХ использован C-18 (5 мкм) с УФдетектором при 254 нм, скоростью потока 1.5 мл/мин, временем удерживания 0.635 мин и водой, ацетонитрилом и 2-пропанолом в качестве подвижной фазы. Для анализа производительности ВЭЖХ и двухлучевой УФ-видимой спектрофотометрии использованы несколько параметров, в том числе стабильность, пределы обнаружения и количественного определения, калибровочные кривые и повторяемость. Исследование сосредоточено на повторяемости спектрофотометрических и ВЭЖХ процедур для 8×10^–6 и 5×10^–6 моль/л флоксина Б. Стандартное отклонение (STD) для десяти спектрофотометрических измерений и восьми ВЭЖХ-измерений составило ±0.0004 и ±2.487 с относительным стандартным отклонением (RSD%) 0.048 и 1.05%. В течение 90-мин периода анализа спектрофотометрические и ВЭЖХ-сигналы для 8×10^–6 и 5×10^–6 моль/л флоксина Б исключительно стабильны. Диапазоны калибровочных кривых 1×10^–6–2×10^–5 моль/л для спектрофотометрии и 1×10^–5–1×10^–4 моль/л для ВЭЖХ. В рассматриваемых диапазонах концентраций получены линейные зависимости с коэффициентами корреляции (r²) 0.9995 для спектрофотометрических и 0.99 для ВЭЖХ-измерений. Пределы обнаружения флоксина Б составили 1.24×10^–8 моль/л (0.0103 ppm) и 8.25×10^–7 моль/л (0.068 ppm) с использованием двухлучевой УФ-видимой спектрофотометрии и методов ВЭЖХ. В случае определения красителя флоксина Б, который добавлен в стоматологические таблетки и образцы зубной пасты, эти методы показывают степень извлечения 95–111%.

1. R. W. Sabnis, Handbook of Biological Dyes and Stains: Synthesis and Industrial Applications (2010).

2. R. Rasooly, FEMS Immunology and Med. Microbiology, 49, 261–265 (2007).

3. P. Melin, C. Norez, I. Callebaut, J. Mem. Biol., 208, 203–212 (2005).

4. Food and Drug Administration, The Code of Federal Regulations of the United States of America, Title 21, Pt 74.1328, U S Government Printing Office, 296 (2001).

5. J. C. Slabbert, J. Esthet. Dent., 2, 177–180 (1990).

6. H. Wang, Biomed. Environ. Sci., 21, 438–441 (2008).

7. L. Y. Brovko, J. Food Prot., 72, 1020–1024 (2009).

8. P. M. Van Midwoud, Anal. Chem. (2010).

9. Q. X. Li, J. P. Alcantara–Licudine, L. P. Li, J. Chromatogr. Sci., 35, 573–577 (1997).

10. H. A. Badran, M. F. Almudhaffer, Q. M. Hassan, Rom. J. Phys., 58, 962–969 (2012).

11. A. Rasooly, A. Weisz, Agents. Chemother., 46, 3650–3653 (2002).

12. A. Hofmann, Cam. Univ. Press., 477–521 (2010).

13. E. A. Taha, N. F. Youssef, Chem. Pharm. Bull., 51, 1444–1447 (2003).

14. P. Nagaraja, A. K. Shrestha, J. Chem. E, 7, 395–402 (2010).

15. A. Fathima, S. Rao, G. Venkateshwarlu, Int. J. Chem. Tech. Res., 3, 1769–1780 (2011).

16. R. H. Obaydo, A. A. Sakur, J. Anal. Meth. Chem., 1–14 (2019).

17. T. O. Mohammed, A. A. Elbashir, Int. J. Drug Dev. Res., 7, 1–4 (2015).

18. Y. A. Martins, C. L. De Oliveira, J. Appl. Spectr., 86, 629–635 (2019).

19. S. M. Gafar, M. A. El–Kelany, S. R. El–Shawadfy, J. Rad. Res. App. Sci., 11, 190–194 (2018).

20. B. A. Taner, J. AOAC Int., 102, 181–188 (2019).

21. K. Basavaiah, O. Zenita, Quim. Nova., 34, 735–742 (2011).

22. A. F. Alghamdi, A. H. Alghamdi, lwarthan, J. Saudi Chem. Soc., 9, 1–10 (2005).

23. W. J. Barreto, S. R. Barreto, I. S. Scarminio, Quim. Nova., 33, 109–113 (2010).

24. J. Vukovic, S. Matsuoka, K. Yoshimura, Talanta, 71, 2085–2091 (2007).

25. A. Jose, M. J. Murillo, Bull. Soc. Chim. Belg., 99, 315–324 (1990).

26. M. Esteki, S. Nouroozi, Z. Shahsavari, Int. J. Cos. Sci., 38, 1–10 (2015).

27. M. B. Nasirudeen, A. U. Amaechi, Nigeria Sci. World J., 10, 1–5 (2015).

28. B. Jorgovanka, R. Blaga, D. Jasmina, Anal. Sci., 24, 769–774 (2008).

29. M. J. Ahmed, M. T. Chowdhury, Anal. Sci., 20, 987–990 (2004).

30. N. Tiwari, A. Anupama, K. Upadhyay, Res. Chem. Int., 39, 3867–3875 (2013).

31. E. K. Janghel, Y. Pervez, Am. J. Anal. Chem., 2, 726–730 (2011).

32. A. S. Amin, M. A. Kassem, Pharm. Meth., 3, 48–55 (2012).

33. B. T. Alquadeib, Saudi Pharm. J., 27, 66–70 (2019).

34. N. Swamy, K. Basavaiah, P. Vamsikrishna, Pharm. Chem. J., 53, 580–588 (2019).

35. M. Attimarad, K. Narayanaswamy, N. S. Venugopala Harsha, Microchem. J., 152, 104365 (2020).

36. A. F. Alghamdi, Pharm. Chem. J., 48, 843–847 (2015).

37. A. Atanassova, R. Lam, D. B. Zamble, Anal. Biochem., 335, 103–111 (2004).

38. G. Yang, Q. Hu, Z. Huang, J. Braz. Chem. Soc., 16, 1154–1159 (2005).

39. Q. Hu, G. Yang, Y. Zhao, Anal. Bioanal. Chem., 375, 831–835 (2003).

40. M. D. Jamaluddin, I. M. Alakili, Malaysian J. Anal. Sci., 7, 113–120 (2001).

41. G. Okano, S. Igarashi, Y. Yamamoto, Inter. J. Environ. Anal. Chem., 95, 135–144 (2015).

42. G. Xing, M. R. Sardar, B. Lin, Talanta, 204, 50–56 (2019).

43. A. F. Alghamdi, M. M. Hefnawy, Y. El-Shabrawy, Dig. J. Nano. Bios., 9, 355–368 (2014).