Analysis of Blue Mussel Hydrolyzate Modified with Hypochlorous Acid Using Spectroscopic Methods

Using surface-enhanced Raman and infrared spectroscopy, the composition of blue mussel Mytilus edulis (M. edulis) acid hydrolysate after modification with HOCl has been characterized. It has been shown that  the molecular targets for HOCl in M. edulis hydrolysate are methionine, histidine and NH₂-group amino acid residues, as well as melanoidins, that provide the antioxidant effect of M. edulis hydrolysate, which is demonstrated in a model system with erythrocytes. Thus, M. edulis hydrolysate at a concentration of 0.05– 0.25% (v/v) dose-dependently inhibited hemolysis initiated by the addition of HOCl (200 μM) to a suspension of erythrocytes, and it completely prevented HOCl-induced hemolysis at a concentration of 0.5% (v/v).

1. Y. Zhou, Q. He, D. Zhou. J. Food Proc. Pres., 41 (2017) e12962

2. S. A. Cunha, R. de Castro, E. R. Coscueta, M. Pintado. Molecules, 26, N 17 (2021) 5228

3. E. Starikova, J. Mammedova, A. Ozhiganova, A. Lebedeva, A. Malashicheva, D. Semenova, E. Khokhlova, E. Mameli, A. Caporali, J. Wills, A. Sokolov. Front. Pharmacol., 12 (2021) 667572

4. W. K. Jung, Z. J. Qian, S. H. Lee, Y. C. Sun, J. S. Nak, H. G. Byun, S. K. Kim. J. Med. Food, 10 (2007) 197—202

5. C. L. Qin, W. Huang, S. Q. Zhou, X. C. Wang, H. H. Liu, M. H. Fan, R. X. Wang, P. Gao, Z. Liao. Fish Shellfish Immunol., 41 (2014) 362—370

6. P. Balseiro, A. Falcó, A. Romero, S. Dios, A. Martínez-López, A. Figueras, A. Estepa, B. Novoa. PLoS One, 6 (2011) e23140

7. B. Wang, L. Li, C. F. Chi, J. H. Ma, H. Y. Luo, Y. F. Xu. Food Chem., 138, N 2-3 (2013) 1713–1719

8. J. Y. Je, P. J. Park, H. G. Byun, W. K. Jung, S. K. Kim. Bioresour. Technol., 96, N 14 (2005) 1624—1629

9. N. Rajapakse, E. Mendis, W. K. Jung, J.-Y. Je, S.-K. Kim. Food Res. Int., 38, N 2 (2005) 175—182

10. A. C. Neves, P. A. Harnedy, R. J. Fitzgerald. J. Aquat. Food Prod. Technol., 25, N 8 (2016) 1221—1233

11. Y. S. Kim, C.-B. Ahn, J.-Y. Je. Food Chem., 202 (2016) 9—14

12. S. H. Cheong, S. H. Lee, Y. J. Jeon, D. S. Lee. Adv. Exp. Med. Biol., 975 (2017) 931—942

13. H. M. Lindqvist, I. Gjertsson, T. Eneljung, A. Winkvist. Nutrients, 10, N 4 (2018) 481

14. Э. А. Старикова, Дж. Т. Маммедова, А. В. Соколов, Н. А. Подоплелова, А. Б. Малашичева, О. Я. Порембская, В. А. Цинзерлинг, Н. В. Соловьев. Флебология, 17, № 4 (2023) 302—311

15. Э. А. Старикова, Д. Т. Маммедова, О. Я. Порембская. Мед. академ. журн., 22, № 4 (2022) 57—67

16. О. М. Панасенко, И. В. Горудко, А. В. Соколов. Успехи биол. химии, 53 (2013) 195—244

17. О. М. Панасенко, Т. И. Торховская, И. В. Горудко, А. В. Соколов. Успехи биол. химии, 60 (2020) 75—122

18. О. М. Панасенко, В. И. Сергиенко. Вестн. Российской академии медицинских наук, 1 (2010) 27—39

19. S. J. Klebanoff. J. Leukoc. Biol., 77 (2005) 598—625

20. I. V. Gorudko, D. V. Grigorieva, E. V. Shamova, N. P. Gorbunov, A. U. Kokhan, V. A. Kostevich, V. B. Vasilyev, O. M. Panasenko, N. V. Khinevich, H. V. Bandarenka, A. A. Burko, A. V. Sokolov. Arch. Biochem. Biophys., 728 (2022) 35853481

21. Г. А. Гусаков, М. В. Пузырев, И. В. Горудко, Е. В. Шамова, Р. Н. Дорожкин. Журн. Бел. гос. ун-та. Физика, 2 (2022) 39—49

22. I. V. Gorudko, D. V. Grigorieva, E. V. Shamova, V. A. Kostevich, A. V. Sokolov, E. V. Mikhalchik, S. N. Cherenkevich, J. Arnhold, O. M. Panasenko. Free Radic. Biol. Med., 68 (2014) 326—334

23. D. V. Grigorieva, I. V. Gorudko, N. A. Grudinina, O. M. Panasenko, I. V. Semak, A. V. Sokolov, A. V. Timoshenko. Int. J. Biol. Macromol., 195 (2022) 30—40

24. E. V. Shamova, I. V. Gorudko, D. V. Grigorieva, A. V. Sokolov, A. U. Kokhan, G. B. Melnikova, N. A. Yafremau, S. A. Gusev, A. N. Sveshnikova, V. B. Vasilyev, S. N. Cherenkevich, O. M. Panasenko. Mol. Cell Biochem., 464 (2020) 31754972

25. I. V. Gorudko, A. V. Sokolov, E. V. Shamova, D. V. Grigorieva, E. V. Mironova, I. V. Kudryavtsev, S. A. Gusev, A. A. Gusev, A. V. Chekanov, V. B. Vasilyev, S. N. Cherenkevich, O. M. Panasenko, A. V. Timoshenko. Arch. Biochem. Biophys., 591 (2016) 87—97

26. K. B. Shumaev, I. V. Gorudko, O. V. Kosmachevskaya, D. V. Grigorieva, О. M. Panasenko, A. F. Vanin, A. F. Topunov, M. S. Terekhova, A. V. Sokolov, S. N. Cherenkevich, E. K. Ruuge. Oxid Med. Cell Longev., 2019 (2019) 2798154

27. Y. J. Zhou, X. L. Yi, J. Y. Wang, Q. Yang, S. J. Wang. Int. J. Agric. Biol. Eng., 11, N 5 (2018) 236—242

28. B. Sjöberg, S. Foley, B. Cardey, M. Enescu. Spectrochim. Acta, A: Mol. and Biomol. Spectroscopy, 128 (2014) 300—311

29. М. В. Новикова. “Разработка технологии получения биологически активных добавок из гидробионтов и отходов их разделки”, автореферат дис. д-ра техн. наук, Москва (2003)

30. H. Takeuchi. Biopolymers (Biospectroscopy), 72 (2003) 305—317

31. К. Накамото. ИК спектры и спектры КР неорганических и координационных соединений, Москва, Мир (1991)

32. G. Socrates. Infrared and Raman Characteristic Group Frequencies: Tables and Charts, New York, John Wiley & Sons (2004)

33. M. Wolpert, P. Hellwig. Spectrochim. Acta, A, 64 (2006) 987—1001

34. C. L. Hawkins, M. J. Davies. J. Biol. Chem., 294 (2019) 19683—19708

35. C. L. Hawkins. Essays Biochem., 64, N 1 (2020) 75—86

36. D. I. Pattison, M. J. Davies. Chem. Res. Toxicology, 14, N 10 (2001) 1453—1464

37. C. L. Hawkins, D. I. Pattison, M. J. Davies. Amino Acids, 25 (2003) 259—274

38. D. I. Pattison, M. J. Davies. Biochemistry, 45, N 26 (2006) 8152—8162

39. R. K. Root, J. Metcalf, N. Oshino, B. Chance. J. Clin. Invest., 55 (1975) 945—955