Preview

Журнал прикладной спектроскопии

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

Исследование пространственной структуры β-амилоидного пептида (25-35) по данным спектроскопии кругового дихроизма в среде, приближенной к условиям мембранного окружения

Аннотация

Методом спектроскопии кругового дихроизма в среде, приближенной к условиям мембранного окружения, исследована пространственная структура β-амилоидного пептида (25-35) в растворе дипальмитоилфосфатидилхолина (DPPC) c холестерином и без него. Обнаружено, что пептид принимает структуры a-спирали, β-слоя, β-поворота и нерегулярных участков, причем их относительные пропорции изменяются в зависимости от наличия холестерина. Результаты спектрального анализа β-амилоидного пептида (25-35) позволяют предложить вторичную структуру пептида в липидном растворителе. Показано, что упорядочение вторичной структуры β-амилоидного пептида (25-35) наблюдается в растворе DPPC, максимально моделирующем среду на поверхности плазматической мембраны.

Об авторах

Г. А. Агаева
Институт физических проблем Бакинского государственного университета
Азербайджан

Баку



Г. З. Наджафова
Азербайджано-французский университет
Азербайджан

Баку



А. Дж. Маммадова
Институт биофизики Министерства науки и образования Азербайджанской Республики
Азербайджан

Баку



Список литературы

1. M. P. Murphy, H. LeVine III. J. Alzheimer’s Disease, 19 (2010) 311—323, doi: 10.3233/JAD-2010-1221

2. L. N. Zhao, L. Lu, L. Y. Chew, Y. Mu. Int. J. Mol. Sci., 15 (2014) 12631—12650, doi: 10.3390/ijms150712631

3. E. Cerf, R. Sarroukh, S. Tamamizu-Kato, L. Breydo, S. Derclaye, Y. F. Dufrêne, V. Narayanaswami, E. Goormaghtigh, J-M. Ruysschaert, V. Raussens. Biochem. J., 421 (2009) 415—423, doi: 10.1042/BJ20090379.

4. R. Sultana, H. F. Poon, J. Cai, W. M. Pierce, M. Merchant, J. B. Klein, W. R. Markesbery, D. A. Butterfield. Neurobiol. Dis., 22 (2006) 76—87, doi: 10.1016/j.nbd.2005.10.004

5. Y. Fezoui, D. M. Hartley, D. M. Walsh, D. J. Selkoe, J. J. Osterhout, D. B. Teplow. Nat. Struct. Biol., 7 (2000) 1095—1099, http://structbio.nature.com

6. G. Shanmugam, R. Jayakumar. Biopolymers, 33 (2004) 421—434, doi: 10.1001/bip.20131

7. G. Shanmugam, P. L. Polavarapu. Biophys. J., 87 (2004) 622—630, doi: 10.1520/biophysj.104040907

8. A. M. D’Ursi, M. R. Armenante, R. Guerrini, S. Salvadori, G. Sorrentino, D. Picone. J. Med. Chem., 12 (2004) 4231—4238, doi: 10.1021/jm040773o

9. G. Wei, J. E. Shea. Biophys. J., 91 (2006) 1638—1647, doi: 10.1529/biophysj/105.079186

10. S. Lee, Y. Kim. Bull. Korean Chem. Soc., 25 (2004) 838—842, doi: 10/5012/bkcs/2004/25/6/838

11. L. Millucci, L. Ghezzi, G. Bernardini, A. Santucci. Current. Protein and Peptide Science, 11 (2010) 54—67, doi: 10.2174/138920310790274626

12. E. Terzi, G. Holzemann, J. Seelig. Biochemistry, 33 (1994) 1345—1350, doi: 10.1021/bi00172a009

13. Y. Song, P. Li, L. Liu, C. Bartolini, M. Dong. Sci. Reports, 8 (2018) 765—774, doi: 10.1038/s41598-017-19106-y

14. H.-H. G. Tsai, J.-B. Lee, Y. C. Shih, L. Wan, F.-K. Shieh, C.-Y. Chen. ChemMedChem, 9, N 5 (2014) 1002—1011, https://chemistryeurope.onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/cmdc.201400062

15. A. Santoro, M. Buonocore, M. Grimaldi, E. Napolitano, A. M. D’Ursi. Int. J. Mol. Sci., 24, N 2 (2023) 971, https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC9867351/

16. N. Kandel, J. O. Matos, S. A. Tatulian. Sci. Rep., 9 (2019) 2689, https://www.nature.com/articles/s41598-019-38749-7

17. G. D’Errico, G. Vitiello, Ornella Ortona, A. Tedeschi, A. Ramunno, A. M. D’Ursi. Biochim. Biophys. Acta, 1778 (2008) 2710—2716

18. S. Dante, T. Hauß, N. A. Dencher. Eur. Biophys J., 35 (2006), 523—531, https://doi.10.1007/s00249-006-0062-x

19. V. Rudajev, J. Novotny. Front Mol. Neurosci., 15 (2022) 937056, doi: 10.3389/fnmol.2022.937056

20. M. D. Rieth, A. Lozano. Biochem. Biophys. Rep., 22 (2020) 100764, doi: 10.1016/j.bbrep.2020.100764

21. L. Whitmore, B. A. Wallace. Nucl. Acids Res., 32 (2004) W668—W673, doi: 10.1093/nar/gkh371

22. L. Whitmore, B. A. Wallace. Biopolymers, 89 (2008) 392—400, doi: 10.1002/bip.20853

23. L. A. Compton, W. C. Johnson. Anal. Biochem., 155 (1986) 155—167, doi: 10.1016/0003-2697(86)90241-1

24. P. Manavalan, W. C. Johnson. Anal. Biochem., 167 (1987) 76—85, doi: 10.1016/0003-2697(87)90135-7

25. T. Kohno, K. Kobayashi, T. Maeda, K. Sato, A. Takashima. Biochemistry, 35 (1996) 16094—16104, doi: 10.1021/bi961598j

26. S. Vivekanandan, J. R. Brender, S. Y. Lee, A. Ramamoorthy. Biochem. Biophys. Res. Commun., 411 (2011) 312—316, doi: 10.1016/j.bbrc.2011.06.133

27. Y. Fezoui, D. B. Teplow. J. Biol. Chem., 277 (2002) 36948—36954, doi: 10.1074/jbc.M204168200

28. Г. А. Агаева. Журн. прикл. спектр., 72 (2005) 416—421

29. G. A. Agaeva, G. Z. Najafova. Russ. Biophysics, 68, N 5 (2023) 871—877, doi: 10.1134/S0006350923050020


Рецензия

Для цитирования:


Агаева Г.А., Наджафова Г.З., Маммадова А.Д. Исследование пространственной структуры β-амилоидного пептида (25-35) по данным спектроскопии кругового дихроизма в среде, приближенной к условиям мембранного окружения. Журнал прикладной спектроскопии. 2025;92(2):216-221.

For citation:


Agaeva G.A., Najafova G.Z., Mammadov A.D. Study of the Spatial Structure of β-Amyloid Peptide (25-35) from Circular Dichroism Spectroscopy in the Medium Close to Membrane Environment Conditions. Zhurnal Prikladnoii Spektroskopii. 2025;92(2):216-221. (In Russ.)

Просмотров: 28


ISSN 0514-7506 (Print)