КОМПОНЕНТНЫЙ АНАЛИЗ И ИДЕНТИФИКАЦИЯ ЧЕРНОГО ТАИТЯНСКОГО ЖЕМЧУГА ИЗ УСТРИЦ Pinctadamargaritifera С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СПЕКТРОСКОПИЧЕСКИХ МЕТОДОВ

Методы спектроскопии комбинационного рассеяния, отражения света видимого, ИК и УФ диапазонов, а также рентгеновской (XRF) использованы для характеризации черного искусственно выращенного таитянского жемчуга, а также разновидностей этого жемчуга, полученных при γ-облучении или колорировании жемчуга нитратом серебра или органическими красителями. Спектры КР показывают, что главным компонентом данных типов жемчуга является арагонит. С использованием КР-спектроскопии на длине возбуждения 514 нм для черного таитянского жемчуга обнаружены характеристические полосы в диапазоне 1100-1700 см^-1. Данные полосы связаны с наличием различных органических компонентов, в том числе конхиолина и других черных биологических пигментов. Положение максимумов в спектрах других видов жемчуга, цвет которых обусловлен наличием органических красителей, варьируется в зависимости от вида органического красителя. Это позволяет идентифицировать таитянский жемчуг, а также жемчуга с наличием органического красителя. Спектры отражения обнаруживают линии 408, 497 и 700 нм, обусловленные наличием порфирина и других черных пигментов. Спектры обработанных красителем черных морских жемчужин показали максимумы поглощения при 216, 261, 300 и 578 нм. При обработке морской жемчужины γ-излучением полоса поглощения 261 нм исчезает, что свидетельствует о деградации конхиолина. Рентгеновская спектроскопия показала присутствие серебра на поверхности окрашенной серебристым нитратом жемчужины.

черная таитянская жемчужина, спектроскопия комбинационного рассеяния света, спектроскопия отражения света видимого-УФ-ИК диапазонов, рентгеновская спектроскопия, black Tahitian cultured pearl, Raman spectroscopy, UV-Vis-NIR reflectance spectroscopy, X-ray fluorescence spectroscopy

1. P.-C. Southgate, A.-C. Beer, Aquaculture, 187, 97-104 (2000).

2. S. Karampelas, E. Fritsch, J.-P. Gauthier, T. Hainschwang, G&G, 47, 31-35 (2011).

3. H. Wang, X. W. Zhu, Y. N. Wang, M. M. Luo, Z. G. Liu, Aquaculture, 358-359, 292-297 (2012).

4. J. T. Wang, J. L. Liang, M. S. Peng, Bull Miner. Petrol. Geochem., 18, 407-409 (1999).

5. J.-J. Myeong, J.-L. Sang, K. Yuri, G.-S. Jun, Y.-K. Hae, L. Yiheng, Y. Yoshiaki, H.-L. Byeong, Opt Express, 19, 6420-6432 (2011).

6. M. Yasunori, M. Tadaki, Jpn. J. Appl. Phys., 27, 235-239 (1988).

7. D. Habermann, A. Banerjee, J. Meijer, A. Stephan, Nucl. Instrum. Methods Phys. Res., B181, 739-743 (2001).

8. S. Karampelas, E. Fritsch, J.-Y. Mevellec, J.-P. Gauthier, S. Sklavounos, T. Soldatos, J. Raman Spectrosc., 38, 217-230 (2007).

9. J. Urmons, S.-K. Sharma, F.-T. Mackenzie, Am. Mineral., 76, 641-646 (1991).

10. R.-W. Gauldie, S.-K. Sharma, E. Volk, Comp. Biochem. Physiol., 118A, No. 3, 753-757 (1997).

11. Y. L. Huang, J. G&G, 8, 5-8 (2006).

12. W. D. Liu, J. G&G, 5, 124-127 (2003).

13. G. Ismael, J. Alberto, I. Kazuma, T. Keisuke, S. Francisco, W. Kazumasa, Pigment Cell Melanoma Res., 26, 917-923 (2013).

14. Y. Liu, T.J. Lu, M. Tao, H. Chen, J. Ke, Color Res. Appl., 38, 328-333 (2013).

15. C. Blay, M. Sham-Koua, V. Vonau, R. Tetumu, P. Cabral, C. L. Ky, Aquacult. Int., 22, 937-953 (2014).

16. L. J. Qi, Y. L. Huang, C. G. Zeng, J. G&G, 10, 20-24 (2008).

17. S. A. Davidenko, M. V. Kurik, Y. P. Piryatinskii, A. B. Verbitsky, Mol. Cryst. Liq. Cryst., 426, 37-45 (2005).

18. M. Paul, S. Tadeusz, Pigment Cell Res., 19, 572-594 (2006).

19. L. P. Li, Z. H. Chen, J. G&G, 4, 16-21 (2002).

20. J.-P. Cuif, Y. Dauphin, C. Stoppa, S. Beeck, Rev. Gemmol. AFG, 115, 9-11 (1993).

21. Y. Dauphin, J.-P. Cuif, Aquaculture, 133, 113-121 (1995).

22. S. Elen, G&G, 38, 66-72 (2003).

23. W. Wang, K. Scarratt, A. Hyatt, A.-H.-T. Shen, M. Hall, G&G, 42, 222-235 (2006).

24. Y. Iwahashi, S. Akamatsu, Fish Sci., 60, 69-71 (1994).