Количественное спектрофотометрическое определение витамина Н в исходных и лекарственных формах в мицеллярной среде

Разработан простой, эффективный и точный метод спектроскопии в видимой области для оценки витамина H (VIT-H) в лекарственных образцах, а также в чистом виде. Метод основан на ингибирующем влиянии VIT-H на реакцию замещения лиганда (LS), облегчаемую Hg²⁺, между фенилгидразином (PHZ) и [Fe(CN)₆]^4–. Стратегия включает в себя замену CN- на PHZ в [Fe(CN)₆]^4–, что приводит к образованию комплекса [Fe(CN)₅ PHZ]^3–. VIT-H количественно можно определить в диапазоне 0.017–1.710 мкг/мл, контролируя поглощение комплекса при 488 нм. Разработанный метод позволяет обнаружить VIT-H при концентрациях вплоть до 0.163 мкг/мл. Эксперименты по рекуперации подтвердили точность и достоверность метода количественного определения витамина Н. Предложенная методология успешно применена для оценки витамина Н в чистом виде и различных фармацевтических препаратах, продемонстрирована хорошая точность и воспроизводимость. Результаты соответствуют предписанному аналитическому протоколу. На предлагаемую методологию не влияют вспомогательные вещества, обычно используемые в лекарственных препаратах.

1. B. S. Solvik, T. A. Strand, Food Nutr. Res., 68, 10256 (2024), doi: 10.29219/fnr. v68.10256.

2. H. M. Almohanna, A. A. Ahmed, J. P. Tsatalis, Dermatol. Ther., 9, 51–70 (2019), doi: 10.1007/s13555018-0278-6.

3. J. Satiaputra, K. E. Shearwin, G. W. Booker, S. W. Polyak, Synth. Syst. Biotechnol., 1, No. 1, 17–24 (2016), doi: 10.1016/j.synbio.2016.01.005.

4. A. Wal, A. Sasmal, R. Singh, P. Yadav, Y. Singh, V. Garg, P. Wal, Curr. Pharmacogenomics Per. Med., 20, No. 2, 73–86 (2023), doi: 10.2174/1875692120666230712160812.

5. C. E. Ofoedu, J. O. Iwouno, E. O. Ofoedu, C. C. Ogueke, C. O. R. Okpala, Peer J., 9, e11940 (2021), doi: 10.7717/peerj.11940.

6. D. P. Patel, S. M. Swink, L. A. Castelo-Soccio, Skin Appendage. Disord., 3, No. 3, 166–169 (2017), doi: 10.1159/000462981.

7. M. Oca, G. Gutiérrez-Ospina, P. Salcedo, A. Fuentes-Farías, E. Meléndez-Herrera, M. Gómez-Chavarín, A. Báez-Saldaña, Adv. Biosci. Biotechnol., 4, 43–50 (2013), doi: 10.4236/abb.2013.47A2006.

8. K. Dakshinamurti, S. Dakshinamurti, M. P. Czubryt, In: Handbook of Famine, Starvation, and Nutrient Deprivation, Eds. V. Preedy, V. Patel, Springer, Cham. (2017), doi: 10.1007/978-3-319-40007-5_73-1.

9. B. A. Watkins, Br. J. Nutr., 61, No. 1, 99–111 (1989), doi: 10.1079/BJN19890096.

10. D. Mukhopadhyay, M. K. Das, S. Dhar, M. Mukhopadhyay, Indian J. Dermatol., 59, No. 5, 502–504 (2014), doi: 10.4103/0019-5154.139910.

11. J. Zempleni, Y. I. Hassan, S. S. Wijeratne, Expert Rev. Endocrinol. Metab., 3, No. 6, 715–724 (2008), doi: 10.1586/17446651.3.6.715.

12. B. S. Sekhon, J. Pharm. Technol. Res. Manag., 1, 43–68 (2013), doi: 10.15415/jptrm.2013.11004

13. B. Das, B. Kumar, W. Begum, A. Bhattarai, M. H. Mondal, B. Saha, Chem. Africa, 5, No. 3, 459–480 (2022), doi: 10.1007/s42250-022-00345-0.

14. S. Shah, S. K. Chatterjee, A. Bhattarai, J. Surfactants Deterg., 19, 201–207 (2016), doi: 10.1007/s11743015-1755-x.

15. A. Motin, M. A. Hafiz Mia, A. K. M. Nasimul Islam, J. Saudi Chem. Soc., 19, 172–180 (2015), doi: 10.1016/j.jscs.2012.01.009.

16. P. Mukerjee, K. J. Mysels, Critical Micelle Concentrations of Aqueous Surfactant Systems United States Department of Commerce, National Bureau of Standards accessed June 2022 (1971).

17. A. Rauf, M. K. Baloch, A. Khan, Z. Khan, S. Rauf, J. Chil. Chem. Soc., 61, 3013–3017 (2016), doi: 10.4067/S0717-97072016000300001.

18. K. Tang, Front. Mar. Sci., 7, 68 (2020), doi: 10.3389/fmars.2020.00068.

19. C. Abadie, G. Tcherkez, Commun. Biol., 2, 379 (2019), https//www.nature.com/articles/s42003-019-0616-y.

20. G. K. Kolluru, X. Shen, C. G. Kevil, Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 40, 874–884 (2020), doi: 10.1161/atvbaha.120.314084.

21. A. Srivastava, Manjusha, N. Srivastava, R. M. Naik, J. Mex. Chem. Soc., 67, No. 1, 46–59 (2023), doi: 10.29356/jmcs.v67i1.1829.

22. T. Iioka, S. Takahashi, Y. Yoshida, Y. Matsumura, S. Hiraoka, H. A. Sato, J. Comp. Chem., 40, 279–285 (2019), doi: 10.1002/jcc.25588.

23. A. Srivastava, R. Singh, N. Srivastava, R. Naik, Tenside Surfactants Deterg, 60, No. 4, 376–386 (2023), doi: 10.1515/tsd-2022-2477.

24. A. Srivastava, V. Sharma, A. Prajapati, N. Srivastava, R. M. Naik, Chem. Chem. Technol., 13, No. 3, 275–279 (2019), doi: 10.23939/chcht13.03.275.

25. A. Srivastava, N. Srivastava, K. Srivastava, S. Afr. J. Chem., 77, 143–149 (2023), doi: 10.17159/03794350/2023/v77a18.

26. A. Srivastava, N. Srivastava, R. Singh, Ind. J. Chem., 62, 931–939 (2023), doi: 10.56042/ijc.v62i9.2574.

27. A. Srivastava, Biointerface Res. Appl. Chem., 11, No. 3, 10654–10663 (2021), doi: 10.33263/BRIAC114.1140411417.

28. A. Srivastava, N. Srivastava, K. Srivastava, R. M. Naik, Russ. J. Phys. Chem. A, 96, No. 14, 3082–3089 (2022), doi: 10.1134/S0036024423020024.

29. A. Srivastava, V. Sharma, V. K. Singh, K. A. Srivastava, J. Mex. Chem. Soc., 66, No. 1, 57–69 (2022), doi: 10.29356/jmcs.v66i1.1654.

30. A. Srivastava, K. Srivastava, Phys. Chem. Res., 10, No. 2, 283–292 (2022), doi: 10.22036/PCR.2021.297875.1943.

31. T. Pérez-Ruiz, C. Martínez-Lozano, A. Sanz, Chromatographia, 58, 757–762 (2003), doi: 10.1365/s10337-003-0088-5.

32. E. Livaniou, D. Costopoulou, I. Vassiliadou, L. Leondiadis, J. O. Nyalala, D. S. Ithakissios, G. P. Evangelatos, J. Chromatogr. A, 881, No. 1-2, 331–343 (2000), doi: 10.1016/s0021-9673(00)00118-7.

33. J. L. Chastain, D. M. Bowers-Komro, D. B. McCormick, J. Chromatogr., 330, No. 1, 153–158 (1985), doi: 10.1016/s0021-9673(01)81971-3.

34. S. L. Crivelli, P. F. Quirk, D. Steible, J. Pharm. Res., 4, 261–262 (1987), doi: 10.1023/A, 1016424615597.

35. T. Yokoyama, T. Kinoshita, J. Chromatogr. A, 542, 365–372 (1991), doi: 10.1016/S0021-9673(01)88775-6.

36. R. Gadzala-Kopciuch, M. Szumski, B. Buszeski, J. Liq. Chromatogr. Rel. Technol., 26, 195–205 (2023), doi: 10.1081/JLC-120017163.

37. M. I. Walash, M. Rizk, Z. A. Sheribah, M. M. Salim, Int. J. Biomed. Sci., 4, No. 3, 238–244 (2008).

38. 38. T. U. Sevgi, Chin. J. Chem., 28, 2209–2215 (2010), doi: 10.1002/cjoc.201090365.

39. A. E. Ekpe, C. Hazen, J. Pharm. Biomed. Anal., 16, No. 8, 1311–1315 (1998), doi: 10.1016/s0731-7085(97)00143-x.

40. K. Gröningsson, L. Jansson, J. Pharm. Sci., 68, No. 3, 364–366 (1979), doi: 10.1002/jps.2600680329.

41. A. Srivastava, V. K. Singh, N. Srivastava, Russ. J. Phys. Chem., 97, 587–595 (2023), doi: 10.1134/S0036024423040027.

42. R. M. Naik, P. K. Tiwari, P. K. Singh, S. B. S. Yadav, Int. J. Chem. Kinet., 39, 447–456 (2007), doi: 10.1002/kin.20258.

43. D. D. Perrin, I. G. Sayce, Talanta, 14, No. 7, 833–842 (1967), doi: 10.1016/0039-9140(67)80105-X.

44. R. Mukherjee, B. B. Dhor, R. Banerjee, S. Mukhopdhyay, J. Coord. Chem., 59, 1157–1165 (2006), doi: 10.1080/00958970500410614.

45. R. M. Naik, B. Kumar, J. Dis. Sci. Technol., 33, No. 5, 647–653 (2012), doi: 10.1080/01932691.2011.579823.

46. L. Brinchi, P. Di Profio, R. Germani, G. Savelli, M. Tugliani, C. A. Bunton, Langmuir, 16, No. 26, 10101–10105 (2000), doi: 10.1021/la000799s.

47. P. Lopez-Cornejo, J. D. Mozo, E. Roldán, M. Dominguez, F. Sanchez, Chem. Phys. Lett., 352, No. 1-2, 33–38 (2002), doi: 10.1016/S0009-2614(01)01287-8.

48. D. Piszkiewicz, J. Am. Chem. Soc., 99, No. 23, 7695–7697 (1977), doi: 10.1021/ja00465a046.

49. P. K. Sen, N. Gani, B. Pal, Ind. Eng. Chem. Res., 52, No. 8, 2803–2813 (2013), doi: 10.1021/ie302656d.

50. C. A. Bunton, F. Nome, F. H. Quina, L. S. Romsted, Acc. Chem. Res., 24, No. 12, 357–364 (1991), doi: 10.1021/ar00012a001.

51. The National Formulary 25. Rockville.; MD, US Pharmacopeial Convention, The United States Pharmacopoeia 30. Electronic version (2007).