Preview

Журнал прикладной спектроскопии

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

СВЕРХЧУВСТВИТЕЛЬНОЕ ФЛУОРЕСЦЕНТНОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ 6-ТИОГУАНИНА В БИОЛОГИЧЕСКИХ ОБРАЗЦАХ НА ОСНОВЕ ОПОСРЕДОВАННОГО НАНОЧАСТИЦАМИ СЕРЕБРА ВЫСВОБОЖДЕНИЯ ЗОНДА АКРИДИНОВОГО ОРАНЖЕВОГО

Полный текст:

Аннотация

Представлен простой и чувствительный метод определения содержания 6-тиогуанина (6-TG). Метод основан на резонансном переносе энергии флуоресценции, при котором донором служит акридиновый оранжевый (АО), акцептором — стабилизированные цитратом наночастицы серебра (Ag-НЧ). Обнаружена нековалентная связь между поверхностями Ag-НЧ и АО, наблюдается эффект тушения флуоресценции. Спектры флуоресценции АО, регистрируемые после дальнейшего добавления 6-TG, свидетельствуют об агрегации Ag-НЧ. В идеальных условиях линейная зависимость имеет место в диапазоне концентраций 0.005—0.04 мкм, предел обнаружения 6-TG 5.3 нмоль. Метод дает возможность проведения экспресс-анализа содержания 6-TG в образцах сыворотки, крови и мочи человека.

Об авторах

V. K. Verma
Национальный технологический институт, Чхаттисгарх
Индия
492010, Райпур


K. Tapadia
Национальный технологический институт, Чхаттисгарх
Индия
492010, Райпур


T. Maharana
Национальный технологический институт, Чхаттисгарх
Индия
492010, Райпур


A. Sharma
Национальный технологический институт, Чхаттисгарх
Индия
492010, Райпур


Список литературы

1. T. P. Huynh, A. Wojnarowicz, M. Sosnowska, S. Srebnik, T. Benincori, F. Sannicolo, F. D’Souza, W. Kutner, Biosens. Bioelectron, 70, 153–160 (2015).

2. A. A. Ensafi, H. Karimi-Maleh, J. Electroanal. Chem., 640, 75–83 (2010).

3. Munshi, N. Pashna, M. Lubin, J. R. Bertino, Oncologist, 19, 760–765 (2014).

4. H. Beitollahi, S. G. Ivari, M. T. Mahani, Mater. Sci. Eng. C, 69, 128–133 (2016).

5. Q. Gueranger, F. Li, M. Peacock, A. Larnicol-Fery, R. Brem, P. Macpherson, J. M. Egly, P. Karran, J. Invest. Dermatol., 134, 1408–1417 (2014).

6. M. T. Osterman, R. Kundu, G. R. Lichtenstein, J. D. Lewis, Gastroenterology, 130, 1047–1053 (2006).

7. R. Zakrzewski, J. Anal. Chem., 64, 1235–1241 (2009).

8. B. B. Prasad, R. Singh, A. Kumar, Carbon, 102, 86–96 (2016).

9. U. Hindorf, M. Lindqvist, C. Peterson, P. Soderkvist, M. Strom, H. Hjortswang, Inflamm. Bowel Dis., 55, 1423–1431 (2006).

10. G. Cangemi, A. Barabino, S. Barco, A. Parodi, S. Arrigo, G. Melioli, Int. J. Immunopathol. Pharmacol., 25, 435–444 (2012).

11. H. Li, X. Chong, Y. Chen, L. Yang, L. Luo, B. Zhao, Y. Tian, Colloids Surf. A, 493, 52–58 (2016).

12. Jacobsen, J. H. Schmiegelow, K. Nersting, J. Chromatogr. B, 881-882, 115–118 (2012).

13. S. A. Coultharda, P. Berry, S. McGarrity, A. Ansari, Christopher P. F. Redfern, J. Chromatogr. B, 1028, 175–180 (2016).

14. N. Bi, M. Hu, H. Zhu, H. Qi, Y. Tian, Hanqi Zhang, Spectrochim. Acta A, 107, 4–30 (2013).

15. X. Y. Deng, Y. Tang, L. H. Wu, L. J. Liu, X. Wang, Y. H. Chen, H. Q. Zhang, Y. Tian, Chin. J. Anal. Chem., 37, 79 (2009).

16. P. D. Tzanavaras, D. G. Themelis, A. Economou, Anal. Chim. Acta, 505, 167–171 (2004).

17. W. Wang, S. F. Wang, F. Xie, Sens. Actuat. B, 120, 238–244 (2016).

18. M. Amjadi, L. Farzampour, J. Lumin., 29, 689 (2014).

19. E. Mozioglu, M. Akgoz, T. Kocagoz, C. Tamerler, Anal. Methods, 8, 4017–4021 (2016).

20. Shi, Jingyu, F. Tian, J. Lyu, M. Yang, J. Mater. Chem. B, 35, 6989–7005 (2015).

21. J. N. Miller, Analyst, 130, 265–270 (2005).

22. P. Blaszkiewicz, M. Kotkowiak, A. Dudkowiak, J. Lumin., 183, 303–310 (2017).

23. Y. Chen, L. Chen, Y. Ou, L. Guo, F. Fu, Sens. Actuat. B: Chem., 233, 691–696 (2016).

24. Y. L. Xu, X. Y. Niu, H. J. Zhang, L. F. Xu, S. G. Zhao, H. L. Chen, X. G. Chen, J. Agric. Food Chem., 63, 1747–1755 (2015).

25. F. Gao, Q. Ye, P. Cui, X. Chen, M. Li, L. Wang. Anal. Methods, 3, 1180–1185 (2011).

26. K. H. Lee, S. J. Chen, J. Y. Jeng, Y. C. Cheng, J. T. Shiea, H. T. Chang, Colloid Interface Sci., 307, 340 (2007).

27. P. Liu, Y. Zhou, M. Guo, S. Yang, Nanoscale, 10, 848–855 (2018).

28. N. Y. Chena, H. F. Lia, Z. F. Gaoa, F. Qub, N. B. Lia, H. Q. Luoa, Sens. Actuat. B: Chem., 193, 730–736 (2014).

29. W. Leesutthiphonchai, W. Dungchai, W. Siangproh, N. Ngamrojnavanich, O. Chailapakul, Talanta, 85, 870–876 (2011).

30. U. P. Raghavendra, J. Thipperudrappa, M. Basanagouda, R. M. Melavanki, J. Lumin., 172, 139–146 (2016).

31. L. Farzampour, M. Amjadi, J. Lumin., 155, 226–230 (2014).

32. S. Qadri, A. Ganoe, Y. Haik, J. Hazard. Mater., 169, 318–323 (2009).

33. J. R. Lakowicz, Principles of Fluorescence Spectroscopy, Kluwer, New York (1999).

34. G. L. Wang, W. M. Dong, X. Y. Zhu, W. J. Zhang, C. Wang, H. J. Jiao, Analyst, 136, 5256–5260 (2011).

35. H. C. Dai, Y. Shi, Y. L. Wang, Y. J. Sun, J. T. Hu, P. J. Ni, Sens. Actuat. B: Chem., 202, 201–208 (2014).

36. A. M. E. Badawy, T. P. Luxton, R. G. Silva, K. G. Scheckel, M. T. Suidan, T. M. Tolaymat, Environ. Sci. Technol., 44, 1260–1266 (2010).


Для цитирования:


Verma V.K., Tapadia K., Maharana T., Sharma A. СВЕРХЧУВСТВИТЕЛЬНОЕ ФЛУОРЕСЦЕНТНОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ 6-ТИОГУАНИНА В БИОЛОГИЧЕСКИХ ОБРАЗЦАХ НА ОСНОВЕ ОПОСРЕДОВАННОГО НАНОЧАСТИЦАМИ СЕРЕБРА ВЫСВОБОЖДЕНИЯ ЗОНДА АКРИДИНОВОГО ОРАНЖЕВОГО. Журнал прикладной спектроскопии. 2020;87(2):345(1)-345(8).

For citation:


Verma V.K., Tapadia K., Maharana T., Sharma A. ULTRASENSITIVE FLUORESCENCE DETERMINATION OF 6-THIOGUANINE IN BIOLOGICAL SAMPLES BASED ON THE SILVER NANOPARTICLE-MEDIATED RELEASE OF ACRIDINE ORANGE PROBE. Zhurnal Prikladnoii Spektroskopii. 2020;87(2):345(1)-345(8).

Просмотров: 132


ISSN 0514-7506 (Print)