КОМПЛЕКСНЫЙ ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ ЛИШАЙНИКА Hypogymnia physodes В РАЗНЫХ ФИТОЦЕНОЗАХ

Изучены физиологические и биохимические показатели, элементный состав образцов Hypogymnia physodes из разных фитоценозов, в которых лишайник находится в условиях различных режимов освещения и влажности воздуха. При выраженном затенении в ельнике в талломах H. physodes выявлены существенное увеличение содержания хлорофилла а и общего азота, максимальный коэффициент феофитинизации и минимальная концентрация фенольных соединений. При ярком освещении в березняке и сосняке большинство этих показателей приобретают минимальные значения, а содержание фенольных соединений становится максимальным. С помощью АЭС-ИСПанализа в талломах H. physodes выявлено 20 элементов (Al, B, Ba, Ca, Cd, Cr, Cu, Fe, K, Mg, Mn, Mo, Na, Pb, Sn, Sr, Ti, V, W, Zn), которые обнаружены в образцах из всех изученных природных сообществ, за исключением Mo, отсутствующего в черноольшанике. Максимальные концентрации почти для половины элементов (Al, B, Fe, K, Mo, Na, Sn, Ti, V) зарегистрированы в образцах из ельника, где благодаря высокому и более стабильному уровню влажности воздуха талломы чаще и продолжительнее находятся в гидратированном состоянии. Анализ взаимной корреляции физиологобиохимических показателей и уровней содержания металлов позволил выявить сложную систему корреляционных связей. Она свидетельствует о высокой скоординированности различных физиологических процессов. Важную роль в поддержании их согласованности при изменении экологических условий играет хлорофилл a, с содержанием которого сопряжено больше различных показателей и уровней концентраций элементов.

физико-химические методы, метод АЭС-ИСП, фотосинтетические пигменты, хлорофилл a, хлорофилл b, феофитинизация, общий азот, фенольные соединения, антиоксидантная активность, элементный состав, металл, макроэлемент, микроэлемент, Hypogymnia physodes, природные фитоценозы, корреляционный анализ

1. G. Sujetovienė. Recent Advances in Lichenology: Modern Methods and Approaches in Biomonitoring and Bioprospectio, 1, Berlin, Springer (2015) 87—118

2. G. Brunialti, L. Frati. Sci. Total Environ., 387, N 1-3 (2007) 289—300

3. A. Parzych, A. Zduńczyk, A. Astel. J. Elementol., 21, N 3 (2016) 781—795

4. Нгует Ле Тхи Бич, С. Е. Журавлева, П. В. Бондаренко, Э. М. Трухан. Аналитика, 4, № 35 (2017) 58—62

5. G. Sujetovienė, P. Smilgaitis, R. Dagiliūtė, J. Žaltauskaitė. Waste Manag., 85 (2019) 60—65

6. M. Jense, S. Chakir, G.B. Feige. Photosynthetica, 37, N 3 (1999) 393—404

7. L. Paoli, T. Pisani, S. Munzi, C. Gaggi, S. Loppi. Biologia, 65, N 5 (2010) 776—783

8. S. A. Pirintsos, L. Paoli, S. Loppi, K. Kotzabasis. Climat. Change, 107, N 3 (2011) 305—328

9. А. Ф. Мейсурова, А. А. Нотов, А. В. Пунгин. Журн. прикл. спектр., 84, № 6 (2017) 961—968 [A. F. Meysurova, A. A. Notov, A. V. Pungin. J. Appl. Spectr., 84, N 6 (2018) 1037—1043]

10. A. Vannini, L. Paoli, V. Nicolardi, L. A. Di Lella, S. Loppi. Acta Botan. Croat., 76, N 2 (2017) 171—176

11. F. Petruzzellis, T. Savi, S. Bertuzzi, A. Montagner, M. Tretiach, A. Nardini. Planta, 247, N 3 (2018) 705—714

12. E. Bianchi, L. Paoli, I. Colzi, A. Coppi, C. Gonnelli, L. Lazzaro, S. Loppi, A. Papini, A. Vannini, R. Benesperi. Mycolog. Progr., 18, N 3 (2019) 463—470

13. L. Paoli, A. Vannini, F. Monaci, S. Loppi. Chemosphere, 199 (2018) 655—660

14. А. Ф. Мейсурова, А.А. Нотов. Журн. прикл. спектр., 83, № 5 (2016) 794—802 [A. F. Meysurova, A. A. Notov. J. Appl. Spectr., 83, N 5 (2016) 832—839]

15. R. K. Port, M. I. Käffer, J. L. Schmitt. Environ. Sci. Pollut. Res., 25, N 33 (2018) 33667—33677

16. А. А. Дорофеев, Е. Р. Хохлова. Ландшафты Тверской области, Тверь, ТвГУ (2016)

17. J. D. Barnes, L. Balaguer, E. Manrique, S. Elvira, A. W. Davison. Environ. Experim. Botany, 32, N 2 (1992) 85—100

18. О. Л. Воскресенская, Е. А. Алябышева, М. Г. Половникова. Большой практикум по биоэкологии, ч. 1, Йошкар-Ола, Марийский гос. ун-т (2006)

19. A. Khadhri, M. Mendili, M. E. M. Araújo, M. R. Seaward. Symbiosis, 79, N 1 (2019) 25—31

20. A. Y. Yashin. Russ. J. Gen. Chem., 78, N 12 (2008) 2566—2571

21. ПНДФ 16.1:2.3:3.11-98. Количественный химический анализ почв. Методика выполнения измерений содержания металлов в твердых объектах методом спектрометрии с индуктивно-связанной плазмой. Москва, Государственный комитет РФ по охране окружающей среды (2005)

22. ГН 2.1.7.2041-06 “Предельно допустимые концентрации (ПДК) химических веществ в почве” (2006)

23. A. Demirbas. Energy Sourc., 26, N 5 (2004) 499—506

24. В. И. Андросова, Е. Ф. Марковская, Е. В. Семенова. Успехи соврем. естествознания, 2 (2015) 120—125

25. Л. Х. Слонов, Т. Л. Слонов, З. М. Ханов. Эколого-физиологические особенности лишайников горной системы Центральной части Северного Кавказа, Нальчик, Эльбрус (2009)

26. K. A. Solhaug, M. Lind, L. Nybakken, Y. Gauslaa. Flora: Morphology, Distribution, Functional ecology of plants, 204, N 1 (2009) 40—48

27. E. Latkowska, J. Bialczyk, M. Wegrzyn, U. Erychleb. Allelopathy J., 47(2) (2019) 221—232

28. А. И. Щербакова. Вестн. Поволжского госуд. технол. ун-та. Сер. Лес. Экология. Природопользование, 4, N 40 (2018) 75—84

29. Н. В. Загоскина, Т. Н. Николаева, П. В. Лапшин, А. Г. Заварзина, А. А. Заварзин. Химия растит. сырья, 4 (2011) 245—249

30. G. Shrestha, L. L. St Clair. Polyphenols in Plants, Academic Press (2014) 53—62

31. Н. А. Голубкина, В. А. Лапченко, Е. В. Лапченко, Т. С. Науменко, Е. С. Крайнюк, Н. А. Багрикова. Бюллетень ГНБС, 130 (2019) 26—35

32. M. Barták, J. Hájek, J. Gloser. Photosynthetica, 38, N 4 (2001) 531—537

33. T. H. Nash III. Lichen Biology, Cambridge, Cambridge University Press (2008) 234—251

34. M. Hauck, A. Paul, S. Gross, M. Raubuch. Environ. Experim. Botany, 49, N 2 (2003) 181—191

35. M. Bačkor, S. Loppi. Biologia Plantarum, 53, N 2 (2009) 214—222

36. В. С. Жданов. Аквариумные растения, Москва, Лесная промышленность (1987)

37. H. G. M. Edwards, N. C. Russell, M. R. D. Seaward. Spectrochim. Acta A: Mol. Biomol. Spectrosc., 53, N 1 (1997) 99—105

38. M. Sacristan, M. Vivas, A. M. Millanes, B. Fontaniella, C. Vicente, M. E. Legaz. Communicating Сurrent Research and Educational Topics and Trends in Applied Microbiology, Badajoz, Formatex Research Center (200) 213—219

39. R. J. Reid, J. E. Hayes, A. Post, J. C. R. Stangoulis, R. D. Graham. Plant, Cell Environ., 27, N 11 (2004) 1405—1414

40. M. K. Chettri, C.M. Cook, E. Vardaka, T. Sawidis, T. Lanaras. Environ. Experim. Botany, 39, N 1 (1998) 1—10

41. J. Garty, Y. Karary, J. Harel. Archiv. Environ. Contamin. Toxicol., 24, N 4 (1993) 455—460