Спектрофлуориметрическое определение гиперицина в лекарственных средствах и растительном сырье
Аннотация
Для использования в качестве стандартного образца из настойки “Диагиперон” выделен гиперицин, хроматографическая чистота которого подтверждена методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с масс-детектированием. Гиперицин представлен единственным хроматографическим пиком с временем удержания 23.10 мин, имеющим в масс-спектре характерный сигнал молекулярного иона [M - H+]- с m/z 504.05. В электронных спектрах поглощения настойки “Диагиперон” и экстракта травы зверобоя продырявленного Hypericum perforatum в метаноле помимо характерных для гиперицина полос при 550 и 590 нм наблюдается полоса поглощения при 665 нм, обусловленная наличием хлорофилла. Показано, что при возбуждении гиперицина (λвозб = 470 нм) в спектре испускания настойки “Диагиперон” присутствуют характерные для гиперицина полосы при 593 и 640 нм, а в спектре испускания экстракта травы зверобоя продырявленного в метаноле кроме полос испускания гиперицина наблюдается незначительная по интенсивности полоса испускания хлорофилла при 670 нм. Установлено, что спектрофотометрическое и спектрофлуориметриче-ское определение гиперицина в настойке “Диагиперон” и в траве зверобоя продырявленного дает схожие результаты, которые соответствуют нормированному содержанию гиперицина в исследуемых образцах.
Ключевые слова
Об авторах
В. Н. ЛеонтьевБеларусь
220006, Минск.
О. И. Лазовская
Беларусь
220006, Минск.
Д. А. Косяк
Беларусь
220006, Минск.
Г. Н. Супиченко
Беларусь
220006, Минск.
Н. А. Коваленко
Беларусь
220006, Минск.
Список литературы
1. M. Y. Mir, S. Hamid, A. N. Kamili, Q. P. Hassan. J. Plant Biochem. Biotechnol., 28, N 4 (2019) 357—373
2. V. A. Huck-Pezzei, L. K. Bittner, J. D. Pallua, H. Sonderegger, G. Abel, M. Popp, G. K. Bonn, C. W Huck. Anal. Methods, 5, N 3 (2013) 616—628
3. A. Agapouda, A. Booker, T. Kiss, J. Hohmann, M. Heinrich, D. Csupor. J. Pharm. Pharmacol., 71, N 1 (2019) 15—37
4. R. Dolezal, I. Houdkova, H. Kalasz, R. Andrys, M. Novak, N. V. Maltsevskaya, N. Karaskova, K. Kolar, E. Novotna, K. Kuca, J. Z. Karasova. Anal. Lett., 52, N 11 (2019) 1788—1812
5. S. Puri, G. Handa, A. K. Kalsotra, V. K. Gupta, A. S. Shawl, O. P. Suri, G. N. Qazi. J. Chromatogr. Sci., 44, N 4 (2006) 177—180
6. W. Li, J. F. Fitzloff. J. Chromatogr. B Biomed. Sci. Appl., 765, N 1 (2001) 99—105
7. A. Zotou, Z. Loukou. Chromatographia, 54, N 3-4 (2001) 218—224
8. A. G. Jensen, C. Cornett, L. Gudiksen, S. H. Hansen. Phytochem. Anal., 11, N 6 (2000) 387—394
9. U. Ruckert, K. Eggenreich, W. Likussar, R. Wintersteiger, A. Michelitsch. Phytochem. Anal., 17, N 3 (2006) 162—167
10. В. А. Куркин, О. Е. Правдивцева. Хим.-фарм. журн., 42, № 10 (2008) 39—42
11. Н. А. Коваленко, Г. Н. Супиченко, В. Н. Леонтьев, О. В. Стасевич. Тр. БГТУ, № 4 (2013) 224—227
12. А. А. Шеряков. Государственная фармакопея Республики Беларусь. Общие и частные фармакопейные статьи, Минск (2007) 346—348
13. Q. Liu, F. Wackenhut, O. Hauler, M. Scholz, S. zur Oven-Krockhaus, R. Ritz, P. M. Adam, M. Brecht, A. J. Meixner. J. Phys. Chem. A, 124, N 12 (2020) 2497—2504
14. ФСП РБ 2563-18. Диагиперон
15. D. Skalkos, E. Gioti, C. D. Stalikas, H. Meyer, T. G. Papazoglou, G. Filippidis. J. Photochem. Pho-tobiol. B Biol., 82, N 2 (2006) 146—151
16. R. J. Ritchie. Photosynth. Res., 89, N 1 (2006) 27—41
17. P. Delcanale, C. Hally, S. Nonell, S. Bonardi, C. Viappiani, S. Abbruzzetti. Photochem. Photobiol. Sci., 19, N 3 (2020) 324—331
18. M. Bublik, C. Head, P. Benharash, M. Paiva, A. Eshraghi, T. Kim, R. Saxton. Photomed. Laser Surg., 24, N 3 (2006) 341—347
19. A. Kubin, H. G. Loew, U. Burner, G. Jessner, H. Kolbabek, F. Wierrani. Pharmazie, 63, N 4 (2008) 263—269
20. T. I. Na Ayudhya, F. T. Posey, J. C. Tyus, N. N. Dingra. J. Chem. Educ., 92, N 5 (2015) 920—923
21. M. Saleem, N. Ahmad, H. Ali, M. Bilal, S. Khan, R. Ullah, M. Ahmed, S. Mahmood. Laser Phys., 27, N 12 (2017), https://doi.org/10.1088/1555-6611/aa8cd7
22. L. Liebes, Y. Mazur, D. Freeman, D. Lavie, G. Lavie, N. Kudler, S. Mendoza, B. Levin, H. Hochster, D. Meruelo. Anal. Biochem., 195, N 1 (1991) 77—85
23. С. В. Дирда, О. В. Слободянюк, В. М. Ящук, М. Ф. Гамалiя, П. В. Срмак. Клiн. та експерим. патол., 11, № 1 (2012) 51—54
24. A. Uzdensky, V. Iani, L. W. Ma, J. Moan. Med. Laser Appl., 21, N 4 (2006) 271—276
25. Н. А. Коваленко, А. В. Янцевич, Г. Н. Супиченко, В. Н. Леонтьев. Тр. БГТУ, № 4 (2015) 207—210
26. D. S. English, K. Das, K. D. Ashby, J. Park, J. W. Petrich, E. W. Castner. J. Am. Chem. Soc., 119, N 48 (1997) 11585—11590
27. G. H. Constantine, J. Karchesy. Pharm. Biol., 36, N 5 (1998) 365—367
28. A. Wirz. Analytical and Phytochemical Investigations on Hypericin and Related Compounds of Hypericum perforatum, Zurich, ETH Zurich (2000) 54—56
Рецензия
Для цитирования:
Леонтьев В.Н., Лазовская О.И., Косяк Д.А., Супиченко Г.Н., Коваленко Н.А. Спектрофлуориметрическое определение гиперицина в лекарственных средствах и растительном сырье. Журнал прикладной спектроскопии. 2020;87(6):971-976.
For citation:
Leontiev V.N., Lazovskaya O.I., Kosyak D.A., Supichenko G.N., Kovalenko N.A. Spectrofluorimetric determination of hypericin in drugs and vegetable raw materials. Zhurnal Prikladnoii Spektroskopii. 2020;87(6):971-976. (In Russ.)