ФЛУОРЕСЦЕНЦИЯ 5- и 6-КАРБОКСИФЛУОРЕСЦЕИНОВЫХ БИФЛУОРОФОРОВ

Синтезированы бифлуорофоры (5-FAM)₂ и (6-FAM)₂ на каркасе 3,5-диаминобензойной кислоты, позволяющем вставлять две молекулы флуорофора в один сайт. Несмотря на сходство структур изомеров 5- и 6-карбоксифлуоресцеинов (5-FAM и 6-FAM), фотофизическое поведение соответствующих бифлуорофоров различается. Квантовый выход люминесценции (6-FAM)₂ в буферном растворе с рН 8.5 в 2.4 раза ниже, чем для (5-FAM)₂. При увеличении вязкости раствора в случае использования водно-глицериновой смеси и при изменении микровязкости в случае мицелярного раствора замедляется структурная релаксация молекул в возбужденном состоянии, что приводит к увеличению интенсивности флуоресценции, времени жизни возбужденных состояний и степени поляризации, т. е. фотофизические свойства синтезированных соединений в значительной степени контролируются вязкостью среды.

1. X.-F. Zhang, J. Zhang, L. Liu. J. Fluores., 24, N 3 (2014) 819—826

2. M. Rodriguez, J. Lapierre, C. R. Ojha, A. Kaushik, E. Batrakova, F. Kashanchi, S. M. Dever, M. Nair, N. El-Hage. Sci. Rep., 7 (2017) 1862

3. Y. L. Sun, Y. H. Sun, R. L. Zhao, K. S. Gao. BMC Biotechnol., 16 (2016) 46

4. M. Wiese, K. Castiglione, M. Hensel, S. Ulrike, B. Christian, J. Jantsch. J. Immunol. Methods, 353 (2010) 102—110

5. F. Hsiao, P.-Y. Huang, T. Aoyagi, S.-F. Chang, J. Liaw. J. Food Drug Anal., 26 (2018) 869—878

6. J. R. Lakowicz. Principles of Fluorescence Spectroscopy, New York, Springer Science + Business Media LLC (2006)

7. В. А. Поведайло, А. П. Ступак, Д. А. Цыбульский, В. В. Шманай, Д. Л. Яковлев. Журн. прикл. спектр., 84, № 3 (2017) 434—442 [V. A. Povedailo, A. P. Stupak, D. A. Tsybulsky, V. V. Shmanai, D. L. Yakovlev. J. Appl. Spectr., 84, N 3 (2017) 452—459]

8. А. П. Блохин, М. В. Квач, В. А. Поведайло, В. В. Шманай, Д. Л. Яковлев. Журн. прикл. спектр., 84, № 1 (2017) 26—32 [A. P. Blokhin, M. V. Kvach, V. A. Povedailo, V. V. Shmanai, D. L. Yakovlev. J. Appl. Spectr., 84, N 1 (2017) 19—24]

9. M. V. Kvach, D. A. Tsybulsky, A. V. Ustinov, I. A. Stepanova, S. L. Bondarev, S. V. Gontarev, V. A. Korshun, V. V. Shmanai. Bioconjug. Chem., 18, N 5 (2007) 1691—1696

10. T. Mineno, T. Ueno, Y. Urano, H. Kojima, T. Nagano. Org. Lett., 8, N 26 (2006) 5963—5966

11. F. T. S. Chan, C. F. Kaminski, G. S. Kaminski Schierle. ChemPhysChem, 12 (2011) 500—509

12. N.-S. Cheng. Ind. Eng. Chem. Res., 47 (2008) 3285—3288

13. C. Marquez, F. Huang, W. M. Nau. IEEE Trans. Nanobiosci., 3 (2004) 39—45

14. S. S. Kumari, S. K. Saha. Phys. Chem. Chem. Phys., 18 (2016) 1551—1563

15. K. Szymczyk, A. Taraba. J. Therm. Anal. Calorim., 126 (2016) 315—326

16. U. Anand, C. Jash, S. Mukherjiee. Interface Sci., 364 (2011) 400—406

17. Y. Gao, C. Yu, G. An. J. Dispers. Sci. Technol., 21 (2000) 279—304

18. A. R. Petcu, E. A. Rogozea, C. A. Lazar, N. L. Olteanu, A. Meghea, M. Mihaly. Arab. J. Chem., 9 (2016) 9—17

19. B.B. Bhowmik, P. Ganguly. Spectrochim. Acta A, 61 (2005) 1997—2003

20. J. Kibblewhite, G. G. Drummond, F. Grieser, P. J. Thistlethwaite. J. Phys. Chem., 93 (1989) 7464—7473

21. A. Song, J. Zhang, M. Zhang, T. Shen, J. Tang. Colloid. Surf., 167 (2000) 253—262

22. H. Neuweiler, A. Schulz, M. Bohmer, J. Enderlein, M. Sauer. JACS, 125 (2003) 5324—5330