Анализ методом ИК-спектроскопии экстрактов Aquilaria malaccensis, полученных с использованием различных экстрагентов

Представлен метод получения метаболитов агарового дерева (Aquilaria malaccensis) с использованием стандартизированного протокола пролиферации каллуса in vitro и спектрального профилирования методом ИК-спектроскопии с использованием растворителей. ИК-спектроскопический анализ позволил идентифицировать функциональные группы в экстрактах этанола, метанола, этилацетата, ацетона и петролейного эфира как из растений in vivo, так и из каллуса in vitro. Экстракты каллуса демонстрируют более высокую интенсивность и разнообразие функциональных групп, связанных с сесквитерпеноидами. В спектрах этанольных и метанольных экстрактов из обоих источников наблюдаются сильные колебания O-H и N-H (3366 и 3400 см⁻1), в то время как экстракты каллуса показали уникальные пики C=O (1076 см⁻1), C=N (1076 см⁻1) и C=C=C (1956 см⁻1), указывающие на окисленные и азотистые сесквитерпеноиды. Экстракты этилацетата и петролейного эфира демонстрируют сильные колебания растяжения и изгиба C-H-связей при 2920, 1460 и 778 см⁻1, характерные для длинных углеводородных цепей в смолистых соединениях. Экстракты этилацетата из каллуса также показали наличие азотсодержащих и ароматических сесквитерпеноидов. Экстракты ацетона выявили ароматические и аминосодержащие пики при 1509, 1400 и 1056 см⁻1. Эти результаты подчеркивают повышенный биосинтетический потенциал культур каллуса. Такой подход снижает зависимость от диких популяций, сохраняет биохимическую целостность продукта и предлагает экологически чистую альтернативу для фармацевтического применения.

1. X. Chen, C. Wang, Q. He, J. Feng, D. Chen, J. Wei, Y. Liu, Molecules, 27, No. 14 (2022), https://doi.org/10.3390/molecules27144528.

2. C. T. Ma, T. L. Ly, T. H. Le Van, T. V. A. Tran, S. W. Kwon, J. H. Park, Phytochemistry, 183, 112630 (2021).

3. C.-N. Mi, W.-L. Mei, H. Wang, L. Yang, W.-H. Dong, C.-J. Gai, J.-Z. Yuan, W.-X. Long, H.-F. Dai, Fitoterapia, 135, 79–84 (2019).

4. W.-H. Dong, H. Wang, F.-J. Guo, W.-L. Mei, H.-Q. Chen, F.-D. Kong, W. Li, K.-B. Zhou, H.-F. Dai, Molecules, 24, No. 3 (2019), https://doi.org/10.3390/molecules24030576.

5. A. Aqmarina Nasution, U. J. Siregar, M. Turjaman Miftahudin, J. Forest Economics, 31, No. 4, 1371–1380 (2020).

6. D.-Q. Peng, Z.-X. Yu, C.-H. Wang, B. Gong, Y.-Y. Liu, J.-H. Wei, Int. J. Anal. Chem., 1–19 (2020).

7. X. Huang, H. Li, Y. Ruan, Z. Li, H. Yang, G. Xie, Y. Yang, Q. Du, K. Ji, M. Yang, Front. Chemistry, 10, 1036082 (2022).

8. M. Klimek-Chodacka, D. Kadluczka, A. Lukasiewicz, A. Malec-Pala, R. Baranski, E. Grzebelus, Tissue and Organ Culture, 143, No. 3, 693–707 (2020).

9. M. El-Sayed, U. I. Aly, M. S. Mohamed, M. R. Rady, Bull. Nat. Salmon Res. Center, 44, No. 1 (2020), https://doi.org/10.1186/s42269-020-00320-0.

10. A. A. Sireen, J. Anbumalarmathi, Int. J. Biochem. Res. Rev., 13–24 (2020).

11. G. Nandhini, J. Anbumalarmathi, K. Mercy Madhumitha, G. Shanmuga Priya, Int. J. Sci. Res. Biol. Sci., 7, No. 1, 95–103 (2020).

12. A. Mansoori, N. Singh, S. K. Dubey, T. K. Thakur, N. Alkan, S. N. Das, A. Kumar, Front. Agronomy, 2 (2020), https://doi.org/10.3389/fagro.2020.582268.

13. M. N. I. Bhuiyan, J. Begum, M. N. H. Bhuiyan, Bangladesh J. Pharmacology, 4, 24–28 (2009).

14. R. Joshi, S. Kholiya, E. None Himanshu, R. Joshi, O. Emmanuel, A. Tewari, T. Kim, B.-K. Cho, Korean J. Agricultural Sci., 50, No. 4, 675–696 (2023).

15. S. Rathore, S. Verma, R. A. Sharma, J. Appl. Res. Medicinal and Aromatic Plants, 37, 100565 (2023).

16. Y. Zhang, X. Liu, W. Chen, J. Li, Y. Yang, Ind. Crops. Products, 199, 116703 (2023).

17. R. Kumar, N. Devi, P. Singh, Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 168, 135–147 (2024).

18. M. M. Rahman, M. E. K. Chowdhury, M. N. Hasan, J. Essential Oil Research, 35, No. 6, 523–534 (2023).

19. T. Huang, X. Li, M. M. Rahman, Y. Yang, Phytochemistry, 222, 113650 (2024).

20. H. T. Nguyen, J. Li, W. Chen, Ind. Crops. Products, 197, 116511 (2023).