ИССЛЕДОВАНИЕ РЕГУЛЯТОРНОГО ДЕЙСТВИЯ 2-ГЕКСАДЕЦЕНАЛЯ НА НЕЙТРОФИЛЫ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ МЕТОДА ХЕМИЛЮМИНЕСЦЕНЦИИ
Аннотация
С использованием метода хемилюминесценции определено влияние 2-гексадеценаля на процессы образования активных форм кислорода и хлора (АФКХ) в стимулированных к фагоцитозу нейтрофилах. Установлено, что в низких концентрациях этот альдегид оказывает праймирующее действие на клетки, усиливая продукцию АФКХ, а в более высоких значительно подавляет этот процесс. Сопоставление результатов хемилюминесцентного и флуоресцентного анализа свойств клеток позволяет заключить, что 2-гексадеценаль является сигнальной молекулой и проявляет свойства регулятора функций нейтрофилов посредством модификации процессов внутриклеточной сигнализации, связанных с изменением продукции АФКХ, реорганизацией цитоскелета, повышением уровня несвязанных ионов кальция в цитоплазме, уменьшением митохондриального мембранного потенциала, и индуцирует апоптоз.
Об авторах
Н. В. Амаэгбери
Белорусский государственный университет
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4
Г. Н. Семенкова
Белорусский государственный университет
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4
А. Г. Лисовская
Белорусский государственный университет; Университет Нотр-Дам, США
Беларусь
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4, Беларусь;
Нотр-Дам, Индиана, 46556 США
С. С. Гусакова
Белорусский государственный университет
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4
В. А. Прокашева
Белорусский государственный университет
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4
О. И. Шадыро
Белорусский государственный университет
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4
Список литературы
1. C. Nathan. Nat. Rev. Immunol., 6 (2006) 173—182
2. T. N. Mayadas, X. Cullere, C. A. Lowell. Annu. Rev. Pathol., 9 (2014) 181—218
3. B. Amulic, C. Cazalet, G. L. Hayes, K. D. Metzler, A. Zychlinsky. Annu. Rev. Immunol., 30 (2012) 459—489
4. R. Grecian, M. K. B. Whyte, S. R. Walmsley. Br. Med. Bul., 128 (2018) 5—14
5. A. C. Carr, C. L. Hawkins, S. R. Thomas, R. Stocker, B. Frei. Free Radic. Biol. Med., 30, N 5 (2001) 526—536
6. J. M. Robinson. Histochem. Cell Biol., 130 (2008) 281—297
7. J. Arnhold, J. Flemmig. Arch. Biochem. Biophys., 500, N 1 (2010) 92—106
8. Ю. А. Владимиров, Е. В. Проскурнина. Успехи биол. химии, 49 (2009) 341—388
9. T. Kuznetsova, T. Kulahava, I. Zholnerevich, N. Amaegberi, G. Semenkova, O. Shadyro, J. Arnhold. Mol. Immunol., 87 (2017) 317—324
10. G. Semenkova, I. Zholnerevich, T. Kulahava, Z. Kvacheva. Free Rad. Biol. Med., 120, Suppl. 1 (2018) S100
11. A. A. Krjukov, G. N. Semenkova, S. N. Cherenkevich, V. Gerein. BioFactors, 26 (2006) 283—292
12. B. Halliwell, M. V. Clement, L. H. Longa. FEBS Lett., 486 (2000) 10—13
13. M. M. Tarpey, D. A. Wink, M. B. Grisham. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol., 286 (2004) 431—444
14. F. Caldefie-Che’zet, S. Walrand, C. Moinard, A. Tridon, J. Chassagne, M.-P. Vasson. Clin. Chim. Acta, 319 (2002) 9—17
15. C. P. LeBel, H. Ischiropoulos, S. C. Bondy. Chem. Res. Toxicol., 5 (1992) 227—231
16. M. Karlsson, T. Kurz, U. T. Brunk, S. E. Nilsson, C. I. Frennesson. Biochem. J., 428 (2010) 183—190
17. S. L. Hempel, G. R. Buettner, Y. Q. O'Malley, D. A. Wessels, D. M. Flaherty. Free Radic. Biol. Med., 27 (1999) 146—159
18. B. Kalyanaramana, V. Darley-Usmar, K. J. A. Davies, P. A. Dennery, H. J. Formanc, M. B. Grisham, G. E. Mann, K. Moore, L. J. Roberts II, H. Ischiropoulos. Free Radic. Biol. Med., 52, N 1 (2012) 1—6
19. N. Bartke, Y. A. Hannun. J. Lipid Res., 50 (2009) 591—596
20. O. Shadyro, A. Lisovskaya, G. Semenkova, I. Edimecheva, N. Amaegberi. Lipid Insight., 8 (2015) 1—9
21. Н. В. Амаэгбери, Г. Н. Семенкова, А. Г. Лисовская, З. Б. Квачева, О. И. Шадыро. Биофизика, 64, № 3 (2019) 544—551
22. N. V. Amaegberi, G. N. Semenkova, Z. B. Kvacheva, A. G. Lisovskaya, S. V. Pinchuk, O. I. Shadyro. Cell Biochem. Funct. (2019) 1—9
23. A. Kumar, H. S. Byun, R. Bittman, J. Saba. Cell Signal., 23 (2011) 1144—1152
24. Z. Liu, Y. Gong, H. S. Byun, R. Bittman. New J. Chem., 34 (2010) 470—475
25. A. Böyum. Scand. J. Immunol., 5 (1976) 9—15
26. F. Kato, M. Tanaka, K. Nakamura. Toxicol. in Vitro, 13 (1999) 923—929
27. D. Shugar. Biochim. Biophys. Acta, 8 (1952) 302—309
28. F. Sivandzade, A. Bhalerao, L. Cucullo. Bio. Protoc., 9, N 1 (2019) 1—13
29. R. A. Hirst, C. Harrison, K. Hirota, D. G. Lambert. Methods in Molecular Biology, Calcium Signaling Protocols: 2 nd ed., Totowa, Humana Press Inc. (1997) 37—45
30. A. Ishaque, M. Al-Rubeai. In: Methods in Biotechnology, Animal Cell Biotechnology, Methods and Protocols, 2 nd ed., Totowa, Humana Press Inc. (2007) 285—299
31. A. I. Kavalenka, G. N. Semenkova, S. N. Cherenkevich. Cell Tissue Biol., 1, N 6 (2007) 551—559
32. J. Zhang, X. Wang, V. Vikash, Q. Ye, D. Wu, Y. Liu, W. Dong. Oxid. Med. Cell. Longev. (2016); ID 4350965, http://dx.doi.org/10.1155/2016/4350965
33. A. Mo’csai, B. Walzog, C. A. Lowell. Cardiovasc. Res., 107 (2015) 373—385
34. B. M. Babior, J. D. Lambeth, W. Nauseef. Arch. Biochem. Biophys., 397 (2002) 342—344
35. B. Samuelsson. Z. Rheumatol., 50, Suppl. 1 (1991) 3—6
36. V. S. Hanna, E. A. A. Hafez. J. Adv. Res., 11 (2018) 23—32
37. K. Futosi, S. Fodor, A. Mócsai. Int. Immunopharmacol., 17 (2013) 638—650
38. M. Reyes-Reyes, N. Mora, A. Zentella, C. Rosales. J. Cell Sci., 114 (2001) 1579—1589
39. A. Bertram, K. Ley. Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz), 59, N 2 (2011) 79—87
40. G. Huang, L. Z. Shi, H. Chi. Cytokine, 48, N 3 (2009) 161—169
41. D. Kim, C. L. Haynes. Analyst, 138, N 22 (2013) 1—17
42. S. Elmore. Toxicol. Pathol., 35 (2007) 495—516
43. P. Pinton, C. Giorgi, R. Siviero, E. Zecchini, R. Rizzuto. Oncogen., 27, N 50 (2008) 6407—6418
44. E. A. Papakonstanti, C. Stournaras. FEBS Lett., 582 (2008) 2120—2127
45. G. Forgacs, S. H. Yook, P. A. Janmey, H. Jeong, C. G. Burd. J. Cell Sci., 117 (2004) 2769—2775
Рецензия
Для цитирования:
Амаэгбери Н.В., Семенкова Г.Н., Лисовская А.Г., Гусакова С.С., Прокашева В.А., Шадыро О.И. ИССЛЕДОВАНИЕ РЕГУЛЯТОРНОГО ДЕЙСТВИЯ 2-ГЕКСАДЕЦЕНАЛЯ НА НЕЙТРОФИЛЫ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ МЕТОДА ХЕМИЛЮМИНЕСЦЕНЦИИ. Журнал прикладной спектроскопии. 2019;86(4):582-589.
For citation:
Amaegberi N.V., Semenkova G.N., Lisovskaya A.G., Gusakova S.S., Prokasheva V.A., Shadyro O.I. STUDY ON REGULATORY EFFECT OF 2-HEXADECENAL ON NEUTROPHILS BY THE CHEMILUMINESCENT METHOD. Zhurnal Prikladnoii Spektroskopii. 2019;86(4):582-589. (In Russ.)
Просмотров: 295
Послать статью по эл. почте 