Preview

Журнал прикладной спектроскопии

Расширенный поиск

ИССЛЕДОВАНИЕ РЕГУЛЯТОРНОГО ДЕЙСТВИЯ 2-ГЕКСАДЕЦЕНАЛЯ НА НЕЙТРОФИЛЫ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ МЕТОДА ХЕМИЛЮМИНЕСЦЕНЦИИ

Аннотация

С использованием метода хемилюминесценции определено влияние 2-гексадеценаля на процессы образования активных форм кислорода и хлора (АФКХ) в стимулированных к фагоцитозу нейтрофилах. Установлено, что в низких концентрациях этот альдегид оказывает праймирующее действие на клетки, усиливая продукцию АФКХ, а в более высоких значительно подавляет этот процесс. Сопоставление результатов хемилюминесцентного и флуоресцентного анализа свойств клеток позволяет заключить, что 2-гексадеценаль является сигнальной молекулой и проявляет свойства регулятора функций нейтрофилов посредством модификации процессов внутриклеточной сигнализации, связанных с изменением продукции АФКХ, реорганизацией цитоскелета, повышением уровня несвязанных ионов кальция в цитоплазме, уменьшением митохондриального мембранного потенциала, и индуцирует апоптоз.

Об авторах

Н. В. Амаэгбери
Белорусский государственный университет
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4


Г. Н. Семенкова
Белорусский государственный университет
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4


А. Г. Лисовская
Белорусский государственный университет; Университет Нотр-Дам, США
Беларусь

220030, Минск, просп. Независимости, 4, Беларусь;

Нотр-Дам, Индиана, 46556 США



С. С. Гусакова
Белорусский государственный университет
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4


В. А. Прокашева
Белорусский государственный университет
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4


О. И. Шадыро
Белорусский государственный университет
Беларусь
220030, Минск, просп. Независимости, 4


Список литературы

1. C. Nathan. Nat. Rev. Immunol., 6 (2006) 173—182

2. T. N. Mayadas, X. Cullere, C. A. Lowell. Annu. Rev. Pathol., 9 (2014) 181—218

3. B. Amulic, C. Cazalet, G. L. Hayes, K. D. Metzler, A. Zychlinsky. Annu. Rev. Immunol., 30 (2012) 459—489

4. R. Grecian, M. K. B. Whyte, S. R. Walmsley. Br. Med. Bul., 128 (2018) 5—14

5. A. C. Carr, C. L. Hawkins, S. R. Thomas, R. Stocker, B. Frei. Free Radic. Biol. Med., 30, N 5 (2001) 526—536

6. J. M. Robinson. Histochem. Cell Biol., 130 (2008) 281—297

7. J. Arnhold, J. Flemmig. Arch. Biochem. Biophys., 500, N 1 (2010) 92—106

8. Ю. А. Владимиров, Е. В. Проскурнина. Успехи биол. химии, 49 (2009) 341—388

9. T. Kuznetsova, T. Kulahava, I. Zholnerevich, N. Amaegberi, G. Semenkova, O. Shadyro, J. Arnhold. Mol. Immunol., 87 (2017) 317—324

10. G. Semenkova, I. Zholnerevich, T. Kulahava, Z. Kvacheva. Free Rad. Biol. Med., 120, Suppl. 1 (2018) S100

11. A. A. Krjukov, G. N. Semenkova, S. N. Cherenkevich, V. Gerein. BioFactors, 26 (2006) 283—292

12. B. Halliwell, M. V. Clement, L. H. Longa. FEBS Lett., 486 (2000) 10—13

13. M. M. Tarpey, D. A. Wink, M. B. Grisham. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol., 286 (2004) 431—444

14. F. Caldefie-Che’zet, S. Walrand, C. Moinard, A. Tridon, J. Chassagne, M.-P. Vasson. Clin. Chim. Acta, 319 (2002) 9—17

15. C. P. LeBel, H. Ischiropoulos, S. C. Bondy. Chem. Res. Toxicol., 5 (1992) 227—231

16. M. Karlsson, T. Kurz, U. T. Brunk, S. E. Nilsson, C. I. Frennesson. Biochem. J., 428 (2010) 183—190

17. S. L. Hempel, G. R. Buettner, Y. Q. O'Malley, D. A. Wessels, D. M. Flaherty. Free Radic. Biol. Med., 27 (1999) 146—159

18. B. Kalyanaramana, V. Darley-Usmar, K. J. A. Davies, P. A. Dennery, H. J. Formanc, M. B. Grisham, G. E. Mann, K. Moore, L. J. Roberts II, H. Ischiropoulos. Free Radic. Biol. Med., 52, N 1 (2012) 1—6

19. N. Bartke, Y. A. Hannun. J. Lipid Res., 50 (2009) 591—596

20. O. Shadyro, A. Lisovskaya, G. Semenkova, I. Edimecheva, N. Amaegberi. Lipid Insight., 8 (2015) 1—9

21. Н. В. Амаэгбери, Г. Н. Семенкова, А. Г. Лисовская, З. Б. Квачева, О. И. Шадыро. Биофизика, 64, № 3 (2019) 544—551

22. N. V. Amaegberi, G. N. Semenkova, Z. B. Kvacheva, A. G. Lisovskaya, S. V. Pinchuk, O. I. Shadyro. Cell Biochem. Funct. (2019) 1—9

23. A. Kumar, H. S. Byun, R. Bittman, J. Saba. Cell Signal., 23 (2011) 1144—1152

24. Z. Liu, Y. Gong, H. S. Byun, R. Bittman. New J. Chem., 34 (2010) 470—475

25. A. Böyum. Scand. J. Immunol., 5 (1976) 9—15

26. F. Kato, M. Tanaka, K. Nakamura. Toxicol. in Vitro, 13 (1999) 923—929

27. D. Shugar. Biochim. Biophys. Acta, 8 (1952) 302—309

28. F. Sivandzade, A. Bhalerao, L. Cucullo. Bio. Protoc., 9, N 1 (2019) 1—13

29. R. A. Hirst, C. Harrison, K. Hirota, D. G. Lambert. Methods in Molecular Biology, Calcium Signaling Protocols: 2 nd ed., Totowa, Humana Press Inc. (1997) 37—45

30. A. Ishaque, M. Al-Rubeai. In: Methods in Biotechnology, Animal Cell Biotechnology, Methods and Protocols, 2 nd ed., Totowa, Humana Press Inc. (2007) 285—299

31. A. I. Kavalenka, G. N. Semenkova, S. N. Cherenkevich. Cell Tissue Biol., 1, N 6 (2007) 551—559

32. J. Zhang, X. Wang, V. Vikash, Q. Ye, D. Wu, Y. Liu, W. Dong. Oxid. Med. Cell. Longev. (2016); ID 4350965, http://dx.doi.org/10.1155/2016/4350965

33. A. Mo’csai, B. Walzog, C. A. Lowell. Cardiovasc. Res., 107 (2015) 373—385

34. B. M. Babior, J. D. Lambeth, W. Nauseef. Arch. Biochem. Biophys., 397 (2002) 342—344

35. B. Samuelsson. Z. Rheumatol., 50, Suppl. 1 (1991) 3—6

36. V. S. Hanna, E. A. A. Hafez. J. Adv. Res., 11 (2018) 23—32

37. K. Futosi, S. Fodor, A. Mócsai. Int. Immunopharmacol., 17 (2013) 638—650

38. M. Reyes-Reyes, N. Mora, A. Zentella, C. Rosales. J. Cell Sci., 114 (2001) 1579—1589

39. A. Bertram, K. Ley. Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz), 59, N 2 (2011) 79—87

40. G. Huang, L. Z. Shi, H. Chi. Cytokine, 48, N 3 (2009) 161—169

41. D. Kim, C. L. Haynes. Analyst, 138, N 22 (2013) 1—17

42. S. Elmore. Toxicol. Pathol., 35 (2007) 495—516

43. P. Pinton, C. Giorgi, R. Siviero, E. Zecchini, R. Rizzuto. Oncogen., 27, N 50 (2008) 6407—6418

44. E. A. Papakonstanti, C. Stournaras. FEBS Lett., 582 (2008) 2120—2127

45. G. Forgacs, S. H. Yook, P. A. Janmey, H. Jeong, C. G. Burd. J. Cell Sci., 117 (2004) 2769—2775


Рецензия

Для цитирования:


Амаэгбери Н.В., Семенкова Г.Н., Лисовская А.Г., Гусакова С.С., Прокашева В.А., Шадыро О.И. ИССЛЕДОВАНИЕ РЕГУЛЯТОРНОГО ДЕЙСТВИЯ 2-ГЕКСАДЕЦЕНАЛЯ НА НЕЙТРОФИЛЫ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ МЕТОДА ХЕМИЛЮМИНЕСЦЕНЦИИ. Журнал прикладной спектроскопии. 2019;86(4):582-589.

For citation:


Amaegberi N.V., Semenkova G.N., Lisovskaya A.G., Gusakova S.S., Prokasheva V.A., Shadyro O.I. STUDY ON REGULATORY EFFECT OF 2-HEXADECENAL ON NEUTROPHILS BY THE CHEMILUMINESCENT METHOD. Zhurnal Prikladnoii Spektroskopii. 2019;86(4):582-589. (In Russ.)

Просмотров: 241


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 0514-7506 (Print)