Экстракция парабенов в пробах косметической и природной воды в сочетании со спектроскопией в УФ-видимой области

Разработан эффективный и быстрый метод жидкостно-жидкостной экстракции с помощью вихревой дисперсии для экстракции парабенов из проб косметической и природной воды. Для обнаружения и количественной оценки парабена использована спектрометрия в УФ-видимой области.
Методология поверхности отклика (RSM), основанная на центральной композитной конструкции, использована для оптимизации факторов (состава и объема экстрагента, времени экстракции, времени и скорости центрифугирования), влияющих на эффективность экстракции. Оптимальные параметры вихревой дисперсионной жидкостно-жидкостной экстракции (VA-DLLE): хлороформ, используемый в качестве экстрагирующего растворителя, объем экстрагента 5 мл, время экстракции 3 мин, время центрифугирования 5 мин и скорость центрифугирования 2400 об/мин. Для парабена предел обнаружения LOD = 0.0476 и предел количественного определения LOQ = 0.1442. Образцы косметических средств с добавками имеют степень извлечения при экстракции в диапазоне 81.2-96.8'%, тогда как эффективность извлечения образцов с добавленной водой при экстракции находится в диапазоне 88.8-100.63%. Для каждого образца эксперимент повторялся (п = 2) с относительным стандартным отклонением <5.74% Для косметических образцов и < 9.03% для образцов воды.

1. T. T. Vo, Y.-M. Yoo, K.-C. Choi, E.-B. Jeung, Reprod. Toxicol., 29, 306-316 (2010).

2. M. Soni, S. L. Taylor, N. Greenberg, G. Burdock, Food Chem. Toxicol., 40, 1335-1373 (2002).

3. M. Farajzadeh, D. Djozan, R. F. Bakhtiyari, Talanta, 1, 1360-1367 (2010).

4. C.-W. Chen, W.-C. Hsu, Y.-C. Lu, J.-R. Weng, C.-H. Feng, Food Chem., 241, 411-418 (2018).

5. R. S. Tavares, F. C. Martins, P. J. Oliveira, J. Ramalho-Santos, F. P. Peixoto, Reprod. Toxicol., 27, 1-7 (2009).

6. T. T. Vo, E.-M. Jung, K.-C. Choi, H. Y. Frank, E.-B. Jeung, Steroids, 76, 675-681 (2011).

7. I. Gonzalez-Marino, J. B. Quintana, I. Rodrigue/, S. Schrader, M. Moeder, Anal. Chim. Acta, 684, 59-66 (2011).

8. M. M. Yusoff, N. Yahaya, N. M. Saleh, M. Raoov, RSC Adv., 8, 25617-25635 (2018).

9. N. Cabaleiro, I. De La Calle, C. Bendicho, I. Lavilla, Anal. Methods, 5, 323-340 (2013).

10. C. Piao, L. Chen, Y. Wang, J. Chromatogr. B, 969, 139-148 (2014).

11. M. Noorashikin, S. Mohamad, M. Abas, Desal. Water Treat., 57, 22353-22361 (2016).

12. M. Noorashikin, N. M. Sohaimi, N. Suda, H. Z. Aziz, S. R. M. Zaini, S. Kandasamy, K. Suresh, J. Sustain. Sci. Manag., 12, 79-95 (2017).

13. Z. Zhong, G. Li, X. Zhong, Z. Luo, B. Zhu, Talanta, 115, 518-525 (2013).

14. Y. Zhang, H. K. Lee, Anal. Chim. Acta, 750, 120-126 (2012).

15. M. Palit, G. Mallard, J. Chromatogr. A, 1218, 5393-5400 (2011).

16. T. Belwal, P. Dhyani, I. D. Bhatt, R. S. Rawal, V. Pande, Food Chem., 207, 115-124 (2016).

17. R. H. Myers, D. C. Montgomery, C. M. Anderson-Cook, Response Surface Methodology: Process and Product Optimization using Designed Experiments, John Wiley & Sons (2016).

18. S. Dharma, H. Masjuki, H. C. Ong, A. Sebayang, A. Silitonga, F. Kusumo, T. Mahlia, Energy Convers. Manage., 115, 178-190 (2016)

19. R. D. Micic, M. D. Tomic, F. E. Kiss, E. B. Nikolic-Djoric, M. D. Simikic, J. Supercrit. Fluids, 103, 90-100 (2015).

20. P. N. Nomngongo, J. C. Ngila, T. A. Msagati, B. Moodley, Microchem. J., 114, 141-147 (2014).

21. U. Alshana, N. Ertas, N. G. Goger, Food Chem., 181, 1-8 (2015).

22. W. Horwitz, AOAC International, Gaithersburg, MD, USA, 12-19 (2002).

23. I. Gonzalez-Marino, J. B. Quintana, I. Rodriguez, R. Cela, Rapid Commun. Mass Spectrom., 23, 1756-1766 (2009).

24. A. Luiz Oenning, D. Lopes, A. Neves Dias, J. Merib, E. Carasek, J. Sep. Sci., 40, 4431-4438 (2017).

25. B. Ebrahimpour, Y. Yamini, A. Esrafili, Anal. Chim. Acta, 751, 79-85 (2012).

26. K. Z. Mousavi, Y. Yamini, S. Seidi, New J. Chem., 42, 9735-9743 (2018).

27. M. S. Norseyrihan, M. S. Noorashikin, M. A. Marinah, S. Y. Beh, A. Ruzita, Malaysian J. Anal. Sci., 22, 365-374 (2018).