Физико-химические свойства и противогрибковая эффективность в отношении Candida albicans синтезированных с использованием экстракта миндаля биогенных наночастиц серебра
Аннотация
Наночастицы серебра (НЧ Ag) синтезированы с использованием экстракта ядер миндаля в качестве природного восстановителя и стабилизатора и охарактеризованы с помощью спектрофотометрии в УФ-видимой области спектра, ИК-Фурье-спектроскопии, рентгеноструктурного анализа и просвечивающей электронной микроскопии. Размер частиц Ag NP, полученный с помощью всех методов, составил 18–23 нм. Показано, что синтезированные Ag NP проявляют умеренное цитотоксическое действие на нормальную линию фибробластов человека (BJ1), IC50 = 98.4 мкг/мл. Получены данные количественной ПЦР, оценивающей экспрессию двух генов вирулентности – ALS3 и HWP1. Показано, что синтезированные НЧ Ag подавляют экспрессию основных генов вирулентности Candida albicans более эффективно (в 1.5 раза для ALS3 и в 1.2 раза для HWP1), чем крем с миконазолом. In vivo показано, что НЧ Ag эффективно снижают грибковую нагрузку в инфицированных тканях кожи с течением времени.
Ключевые слова
Об авторах
M. ElywaЕгипет
Загазиг
M. Abd El-Hamid
Египет
Загазиг
T. Adel
Египет
M. Hanafy
Египет
Загазиг
Список литературы
1. P. Mathur, S. Jha, S. Ramteke, N. K. Jain, Art. Cells Nanomed. Biotechnol., 46, 115–126 (2018), https://doi.org/10.1080/21691401.2017.1414825.
2. S. Jabeen, R. Qureshi, M. Munazir, M. Maqsood, M. Munir, S. S. H. Shah, B. Z. Rahim, Mater. Res. Express, 8, 092001 (2021), https://doi.org/10.1088/2053-1591/ac1de3.
3. S. U. Khan, S. I. Anjum, M. J. Ansari, M. H. U. Khan, S. Kamal, K. Rahman, M. Shoaib, S. Man, A. J. Khan, S. U. Khan, D. Khan, Saudi J. Biol. Sci., 26, 1815–1834 (2019), https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2018.02.010.
4. D. T. Rejepov, A. A. Vodyashkin, A. V. Sergorodceva, Y. M. Stanishevskiy, Biomedical Applications of Silver Nanoparticles (Review), Drug Development and Registration, 10, 176–187 (2021), https://doi.org/10.33380/2305-2066-2021-10-3-176-187.
5. I. Pantic, D. Sarenac, M. Cetkovic, M. Milisavljevic, R. Rakocevic, S. Kasas, Curr. Med. Chem., 27, 411–422 (2018), https://doi.org/10.2174/0929867325666180719110432.
6. Q. H. Tran, V. Q. Nguyen, A. T. Le, Adv. Natural Sci.: Nanoscience and Nanotechnology, 4, 049501 (2013), https://doi.org/10.1088/2043-6262/4/3/033001.
7. T. M. Tolaymat, A. M. El Badawy, A. Genaidy, K. G. Scheckel, T. P. Luxton, M. Suidan, Sci. Total Environ., 408, 999–1006 (2010), https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2009.11.003.
8. H. H. Lara, D. G. Romero-Urbina, C. Pierce, J. L. Lopez-Ribot, M. J. Arellano-Jiménez, M. Jose-Yacaman, J. Nanobiotechnology, 13, 91 (2015), https://doi.org/10.1186/s12951-015-0147-8.
9. C. Longhi, J. P. Santos, A. T. Morey, P. D. Marcato, N. Duran, P. Pinge-Filho, G. Nakazato, S. F. Yamada-Ogatta, L.M. Yamauchi, Med. Mycol., 54, 428–432 (2016), https://doi.org/10.1093/mmy/myv036.
10. M. Jalal, M. A. Ansari, M. A. Alzohairy, S. G. Ali, H. M. Khan, A. Almatroudi, M. I. Siddiqui, Int. J. Nanomedicine, 14, 4667–4579 (2019), https://doi.org/10.2147/IJN.S210449.
11. N. Perween, H. M. Khan, N. Fatima, J. Microbiol. Exp., 7, 49–54 (2019), https://doi.org/10.15406/jmen.2019.07.00240.
12. A. Arangia, A. Ragno, M. Cordaro, R. D’Amico, R. Siracusa, R. Fusco, F. Marino Merlo, A. Smeriglio, D. Impellizzeri, S. Cuzzocrea, G. Mandalari, R. Di Paola, Int. J. Mol. Sci., 24, 12115 (2023), https://doi.org/10.3390/ijms241512115.
13. A. J. Esfahlan, R. Jamei, R. J. Esfahlan, Food Chem., 120, 349–360 (2010), https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2009.09.063.
14. D. Barreca, S. M. Nabavi, A. Sureda, M. Rasekhian, R. Raciti, A. S. Silva, G. Annunziata, A. Arnone, G. C. Tenore, İ. Süntar, G. Mandalari, Nutrients, 12, 672 (2020), https://doi.org/10.3390/nu12030672.
15. C. W. Zhang, X. J. Zhong, Y. S. Zhao, M. S. R. Rajoka, M. H. Hashmi, P. Zhai, X. Song, Pharm. Res. Modern Chin. Med., 7, 100262 (2023), https://doi.org/10.1016/j.prmcm.2023.100262.
16. A. M. Thawabteh, Z. Swaileh, M. Ammar, W. Jaghama, M. Yousef, R. Karaman, S. A. Bufo, L. Scrano, Toxins (Basel), 15, 93 (2023), https://doi.org/10.3390/toxins15020093.
17. S. Wunnoo, S. Paosen, S. Lethongkam, R. Sukkurd, T. Waen-ngoen, T. Nuidate, M. Phengmak, S. P. Voravuthikunchai, Biotechnol. Bioeng., 118 (2021), https://doi.org/10.1002/bit.27675.
18. S. D. Halbandge, A. K. Jadhav, P. M. Jangid, A. V. Shelar, R. H. Patil, S. M. Karuppayil, J. Antibiotics, 72, 640–644 (2019), https://doi.org/10.1038/s41429-019-0185-9.
19. E. Paluch, J. Szperlik, Ł. Lamch, K.A. Wilk, E. Obłąk, Sci. Rep., 11, 8896 (2021), https://doi.org/10.1038/s41598-021-88244-1.
20. G. Wall, D. Montelongo-Jauregui, B. Vidal Bonifacio, J.L. Lopez-Ribot, P. Uppuluri, Curr. Opin. Microbiol., 52, 1–6 (2019), https://doi.org/10.1016/j.mib.2019.04.001.
21. M. B. Esfahani, A. Khodavandi, F. Alizadeh, N. Bahador, Appl. Biochem. Biotechnol., 196, 4205–4233 (2024), https://doi.org/10.1007/s12010-023-04758-6.
22. P. Vinothini, B. Malaikozhundan, R. Krishnamoorthi, M. Dayana Senthamarai, D. Shanthi, Inorg. Chem. Commun., 156, 111–206 (2023), https://doi.org/10.1016/j.inoche.2023.111206.
23. B. Malaikozhundan, J. Vinodhini, M. A. R. Kalanjiam, V. Vinotha, S. Palanisamy, S. Vijayakumar, B. Vaseeharan, A. Mariyappan, Bioprocess Biosyst. Eng., 43 (2020), https://doi.org/10.1007/s00449-020-02346-0.
24. E. Vitális, F. Nagy, Z. Tóth, L. Forgács, A. Bozó, G. Kardos, L. Majoros, R. Kovács, Mycoses, 63 (2020), https://doi.org/10.1111/myc.13049.
25. R. V. Sionov, M. Feldman, R. Smoum, R. Mechoulam, D. Steinberg, Sci. Rep., 10, 134728 (2020), https://doi.org/10.1038/s41598-020-70650-6.
26. I. Ahamad, F. Bano, R. Anwer, P. Srivastava, R. Kumar, T. Fatma, Front Microbiol., 12, 741493 (2022), https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.741493.
27. B. Malaikozhundan, B. Vaseeharan, S. Vijayakumar, R. Sudhakaran, N. Gobi, G. Shanthini, Biocatal. Agric. Biotechnol., 8, 189–196 (2016), https://doi.org/10.1016/j.bcab.2016.09.007.
28. A. M. Ammar, M. I. A. El-Hamid, R. M. S. El-Malt, D. S. Azab, S. Albogami, M. M. Al-Sanea, W. E. Soliman, M. M. Ghoneim, M. M. Bendary, Antibiotics, 10, 1342 (2021), https://doi.org/10.3390/antibiotics10111342.
29. M. C. Arendrup, T. F. Patterson, J. Infectious Diseases, 216, 445–451 (2017), https://doi.org/10.1093/infdis/jix131.
30. I. Syed Ahamed Hussain, V. Jaisankar, Polymer. Test, 62, 154–161 (2017), https://doi.org/10.1016/j.polymertesting.2017.06.021.
31. S. K. Nagaraja, S. Nayaka, R. S. Kumar, Appl. Biochem. Biotechnol., 195, 1197–1215 (2023), https://doi.org/10.1007/s12010-022-04201-2.
32. M. Bhat, B. Chakraborty, R. S. Kumar, A. I. Almansour, N. Arumugam, D. Kotresha, S. S. Pallavi, S. B. Dhanyakumara, K. N. Shashiraj, S. Nayaka, J. King Saud. Univ. Sci., 33, 101296 (2021), https://doi.org/10.1016/j.jksus.2020.101296.
33. K. Gopinath, S. Gowri, A. Arumugam, J. Nanostruct. Chem., 3, No. 1 (2013), https://doi.org/10.1186/2193-8865-3-68.
34. Y. H. Tartor, G. A. Elmowalid, M. N. Hassan, A. Shaker, D. F. Ashour, T. Saber, Front Cell Infect Microbiol., 12, 807218 (2022), https://doi.org/10.3389/fcimb.2022.807218.
35. T. Mosmann, J. Immunol. Methods, 65, 55–63 (1983), https://doi.org/10.1016/0022-1759(83)90303-4.
36. M. I. Thabrew, R. D. Hughes, I. G. Mcfarlane, J. Pharmacy and Pharmacology, 49, 1132–1135 (1997), https://doi.org/10.1111/j.2042-7158.1997.tb06055.x.
37. J. S. Yuan, A. Reed, F. Chen, C. N. Stewart, BMC Bioinformatics, 7, 85 (2006), https://doi.org/10.1186/1471-2105-7-85.
38. G. Arrázola Paternina, F. Dicenta Lopez-Higuera, N. Grané Teruel, Revista de La Facultad de Agronomia, 32 (2015).
39. Akshay, A. Verma, A. Saroha, R. Garg, Int. J. Life Sci. Pharma Res., 12, No. 6, 220–233 (2022), https://doi.org/10.22376/ijpbs/lpr.2022.12.6.
40. N. Gurram, M. Kamble, M. Gunde, A. Ingole, D. Dhabarde, J. Baheti, J. Phytopharm., 6, 171–173 (2017), https://doi.org/10.31254/phyto.2017.6304.
41. R. Surega, B. Anita, S. Ramakrishnan, K. Gunasekaran, S. Nakkeran, Int. J. Curr. Microbiol. Appl. Sci., 9, 1939–1947 (2020), https://doi.org/10.20546/ijcmas.2020.902.221.
42. S. R. Vijayan, P. Santhiyagu, M. Singamuthu, N. Kumari Ahila, R. Jayaraman, K. Ethiraj, Sci. World J. (2014), https://doi.org/10.1155/2014/938272.
43. S. V. Kumar, S. P. Kumar, D. Rupesh, K. Nitin, J. Chem. Pharm. Res., 3, 675–684 (2011).
Рецензия
Для цитирования:
Elywa M., Abd El-Hamid M., Adel T., Hanafy M. Физико-химические свойства и противогрибковая эффективность в отношении Candida albicans синтезированных с использованием экстракта миндаля биогенных наночастиц серебра. Журнал прикладной спектроскопии. 2025;92(6):829.
For citation:
Elywa M., Abd El-Hamid M., Adel T., Hanafy M. Biogenic Silver Nanoparticles Synthesized Using Almond Extract: Physicochemical Properties and Antifungal Efficacy Against Candida albicans. Zhurnal Prikladnoii Spektroskopii. 2025;92(6):829.





















